La compaction de la chromatine au cours de la spermatogenèse Rôle des bromodomaines de la protéine Brdt

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Université Grenoble I - Université Joseph Fourier École doctorale de chimie et science du vivant THÈSE Pour l' obtention du grade de DOCTEUR DE L' UNIVERSITÉ DE GRENOBLE I Discipline : Biologie structurale La compaction de la chromatine au cours de la spermatogenèse Rôle des bromodomaines de la protéine Brdt Présentée et soutenue publiquement par Jeanne Morinière le 7 octobre 2008 Travaux effectués au Laboratoire Européen de Biologie Moléculaire de Grenoble Devant le jury composé de : Dr . Robert Feil : Rapporteur Dr . Marc Ruff : Rapporteur Dr . Anne Houdusse : Examinateur Pr . Winfried Weissenhorn : Examinateur Dr . Saadi Khochbin : Examinateur dirigée par le Dr . Christoph Müller Table des matières Préambule 6 Introduction 8 A . Structures de la chromatine 8 I. Territoires fonctionnels 8 II . Le nucléofilament « structure en collier de perles » 8 III . Structures d' ordre supérieur 14 B . Dynamique de la structure chromatinienne 17 I. Le remodelage ATP-dépendant 17 II . Modifications post-traductionnelles des histones 18 III . Intégration de variants d' histones 20 IV . Protéines de liaison 23 C . Compaction de la chromatine pendant la spermiogenèse 24 I. La spermatogenèse en bref 24 II . Modifications de la chromatine au cours de la spermiogenèse 27 D . La protéine Brdt 32 I. Fonctions 32 II . Brdt appartient à la famille des protéines BET 33 E . Le bromodomaine : structure et fonction 38 F . Déroulement du travail de thèse 41 Matériels et Méthodes 43 A . Production des protéines 43 I. Clonage 43 II . Expression 45 III . Purification 45 IV . Concentration et conservation 46 B . Diffusion statique de lumière 47 C . Réticulation chimique 47 D . Microcalorimétrie 48 I. La calorimétrie à titration isotherme 48 II . Mode opératoire 49 E . Cristallographie aux rayons X 51 I. Production des cristaux 51 II . Quelques notions de cristallographie 53 III . Collecte et traitement des données de diffraction 56 IV . Affinement du modèle 59 V. Validation du modèle moléculaire 61 Résultats : Chapitre 1 Caractérisation biochimique des protéines ? C-Brdt , BD1 et BD2 63 A . Analyse de la protéine ? C-Brdt 63 I. Structure primaire 63 II . Comportement en solution 64 III . Recherche d' états oligomériques 64 B . Analyse de la protéine BD1 66 I. Comportement en solution 66 II . Recherche d' états oligomériques 67 C . Analyse de la protéine BD2 69 D . Analyse du mélange des protéines BD1 et BD2 70 E . Analyse de la protéine BD1-K61Q 70 Résultats : Chapitre 2 Quantification des affinités de Brdt vis à vis des différents états d' acétylation des queues N terminales des histones H3 et H4 71 A . Expériences préliminaires 71 I. Affinités de BD1 pour des peptides H4 courts 71 II . Affinités de BD2 pour des peptides H4 courts 72 B . Affinités pour la queue N terminale de l' histone H4 72 I. Affinités pour un peptide H4 tétra-acétylé 73 II . Affinités de BD1 des peptides H4 di-acétylés 75 III . Conclusion 75 C . Affinités pour la queue N terminale de l' histone H3 77 I. Affinités de BD1 et BD2 pour un peptide H3 tétra-acétylé 77 II . Affinités de BD2 pour des peptides H3 mono et di-acétylés 78 D . Affinités de la protéine BD1-K61Q 78 Résultats : Chapitre 3 Structures cristallographiques des bromodomaines de Brdt en complexe avec les queues d' histones H3 et H4 80 A . Structure de BD1 en complexe avec un peptide acétylé mimant la queue N terminale de l' histone H4 80 I. Cristallisation de BD1 en complexe avec les peptides H4 tétra-acétylé et H 4 -K 5 K 8 ac 80 II . Résolution des structures cristallographiques de BD1 en complexe avec les peptides H4 tétra-acétylé et H 4 -K 5 K 8 ac 83 III . Arrangement dans l' unité asymétrique 88 IV . Architecture de BD1 90 V. Surfaces et interactions du complexe BD 1 / H 4 -K 5 K 8 ac 92 B . Structure de BD2 en complexe avec plusieurs peptides acétylés . 98 I. Cristallisation de BD2 en complexe avec des peptides H3 et H4 98 II . Résolution des structures de BD2 en complexe avec des peptides H3 et H4 99 III . Structure de BD2 en complexe avec le peptide H 3 -K 18 ac 102 C . Analyse des structures tridimensionnelles des bromodomaines de Brdt 109 I. Des structures de bromodomaine canoniques 109 II . Interactions avec le peptide acétylé 110 III . Particularités de l' interaction de BD1 et du peptide H 4 -K 5 K 8 ac 114 IV . Particularités de l' interaction de BD2 et du peptide H 3 K 18 ac 116 Discussion et perspectives 119 A . Importance du premier bromodomaine de Brdt 119 I. Brdt reconnaît l' histone H4 via son premier bromodomaine 119 II . Brdt-BD1 reconnaît spécifiquement le motif di-acétylé K 5 / K 8 ac de H4 120 B . Le second bromodomaine de Brdt reconnaît la modification H 3 K 18 ac 120 C . Comparaison des affinités de Brdt avec celles des autres protéines de la famille BET 121 D . Déterminants structuraux à l' origine de la spécificité des bromodomaines de Brdt 124 I. Importance de la boucle BC 124 II . BD2 et la di-acétylation 127 III . Recherche d' autres sites potentiels pour BD2 127 E . Dimérisation 129 I. Cas de Brdt et de ses homologues 129 II . Des modes de dimérisation ? 130 F . La mutation K61Q 130 I. Effet in vitro sur l' affinité vis-à-vis de H3 et H4 130 II . Effets in vivo 131 III . Apports de la structure tridimensionnelle de BD1 dans la compréhension des effets de la mutation K61Q 132 IV . Hypothèses : à la recherche d' un mécanisme d' auto-régulation de Brdt 133 V. Conclusion 134 G. Perspectives 135 I. Le rôle des régions adjacentes 135 II . Un dialogue entre les deux bromodomaines de Brdt ? 136 III . Brdt et la compaction de la chromatine 137 IV . Remarque sur le cas des homologues CBP / P 300 139 Conclusion générale 141 Bibliographie 142 Annexes 153 Annexe 1 : Librairies utilisées pour définir le résidu acétyl-lysine 154 Annexe 2 : Alignement de séquence des homologues de la famille BET 155 Annexe 3 : Structures et affinités de bromodomaines 157 Annexe 4 : Résultats détaillés des mesures d' ITC 160 Annexe 5 : La mutation K61Q de Brdt et l' infertilité masculine ( article soumis ) 174 Préambule Nous avons étudié les bromodomaines de la protéine Brdt . Ils sont impliqués dans la compaction du génome qui a lieu au cours des dernières étapes de la spermatogenèse chez les vertébrés . Dans cette étude nous allons essayer d' avancer dans la compréhension de la fonction de la protéine . Pour cela il nous faut passer en revue ce qui est connu des phénomènes de compaction de la chromatine et en particulier de la compaction qui se produit au cours de la spermatogenèse . Dans le noyau des cellules eucaryotes , l' ADN s' associe à des protéines pour former la chromatine . La quasi-totalité du génome , soit environ 35000 gènes répartis sur presque 2 mètres d' ADN chez l' humain , est ainsi compactée et organisée dans un noyau dont le diamètre avoisine les 10 µM. L' unité fondamentale de la chromatine est le nucléosome . Il est formé par l' enroulement de l' ADN autour de protéines appelées histones . Sa répétition tout au long de l' ADN forme le nucléofilament qui constitue le premier niveau de compaction de l' ADN . Le nucléofilament peut adopter plusieurs niveaux d' organisation plus compacts , allant d' une fibre de 30 nm de diamètre au niveau de condensation le plus élevé atteint au sein du chromosome métaphasique . Dans le cas de la spermatogenèse , la condensation finale de l' ADN est six fois plus forte que dans le cas des chromosomes mitotiques des cellules somatiques . Les histones subissent une acétylation massive avant d' être en grande partie remplacées par de petites protéines basiques appelées protéines de transition qui seront elles-même remplacées par d' autres protéines , les protamines . Ce phénomène est nécessaire pour permettre au spermatozoïde d' être le plus mobile possible et implique que la cellule puisse temporairement fonctionner sans l' ADN nucléaire . La protéine Brdt est impliquée dans les premières étapes de cette compaction , avant le remplacement des histones par des protéines de transition . Ce remodelage a comme substrat une chromatine de composition similaire à celle des cellules somatiques . Les mécanismes impliqués doivent en conséquence être comparables à ceux observés dans les cellules somatiques . Dans l' introduction qui va suivre , nous étudierons la structure de la chromatine et sa dynamique . Nous passerons ensuite en revue les facteurs susceptibles d' influer sur la compaction de la chromatine au cours de la spermatogenèse et nous examinerons la façon dont la protéine Brdt y est impliquée . Nous étudierons enfin les propriétés des bromodomaines . Partie I : Introduction Introduction A . Structures de la chromatine I. Territoires fonctionnels Dans un noyau interphasique on peut observer par microscopie optique deux types de structures chromatiniennes : i . L' hétérochromatine , dense , est définie comme une structure qui ne change pas d' état de condensation au cours du cycle cellulaire . Elle correspond à un état répressif vis à vis de la transcription ; son niveau d' acétylation est faible . L' hétérochromatine est localisée principalement en périphérie du noyau et du nucléole . On distingue l' hétérochromatine constitutive qui contient peu de gènes , formée principalement de séquences répétées et dont les plus grandes régions sont situées à proximité des centromères ( hétérochromatine péricentrique ) et des télomères , de l' hétérochromatine facultative qui contient des régions codantes , comme le chromosome X inactif chez la femelle des mammifères . ii . L' euchromatine , claire , est décondensée . Elle est répartie à l' intérieur du nucléoplasme et contient les régions actives du génome . II . Le nucléofilament « structure en collier de perles » a . la fibre de 11 nm Le nucléofilament , encore appelé fibre de 11 nm à cause de son diamètre , forme par enroulement de l' ADN autour des octamères d' histones un collier dont les nucléosomes sont les perles . Environ 80 % de l' ADN nucléaire est engagé dans la formation des nucléosomes . Le nucléosome est composé d' une particule de coeur et d' une région de liaison ( ou région internucléosomale ) qui relie deux particules de coeur adjacentes . La longueur de l' ADN internucléosomale varie selon les espèces et le type cellulaire de 10 à 115 paires de bases environ . Au total , cet ADN constitue les 20 % restants de l' ADN nucléaire . Des histones particulières , appelées histones de liaison sont incorporées au niveau de ces régions de liaison . b . le nucléosome La structure du nucléosome a été très conservée au cours de l' évolution . La structure cristallographique de sa particule de coeur a été déterminée pour plusieurs espèces à des résolutions allant jusqu'à 1 , 9 Å ( Chantalat et al. , 2003 ; Clapier et al. , 2008 ; Luger and Richmond , 1998b ; Tsunaka et al. , 2005 ; White et al. , 2001 ; Luger et al. , 1997 ) [ Figure 1 ] . Elle est composée de 146 paires de bases d' ADN faisant 1.65 tour autour d' un octamère protéique comprenant deux exemplaires de chacune des histones H3 , H4 , H2A et H2B. L' ADN est maintenu par 116 liaisons hydrogène directes avec les histones localisées en 14 endroits distincts de la particule ( Luger and Richmond , 1998b ) . Les queues N terminales des histones , flexibles , ne sont pas définies dans la structure cristallographique , sauf celle de H4 qui établit une interaction avec un dimère H2A-H2B appartenant à un nucléosome voisin et se trouve ainsi stabilisée ( Luger and Richmond , 1998a ) . Ces queues portent de nombreux sites de modifications post-traductionnelles dont la combinatoire transmet d' importantes informations épigénétiques . Plusieurs aspects de la structure du nucléosome sont intéressants à noter pour comprendre sa dynamique ( d' après Luger , 2006 ) : i . Le nucléosome présente un assemblage modulable dans lequel les deux dimères H2A / H2B peuvent être retirés sans que l' interaction de l' ADN et du tétramère ( H3-H4 ) 2 ne soit rompue . Cela reflète le mode d' assemblage in vivo et in vitro de la particule . ii . La surface du nucléosome est très principalement constituée par l' octamère d' histone et présente un relief électrostatique varié ( Chakravarthy et al. , 2005b ) . Cette surface est impliquée dans des interactions entre nucléosomes qui conditionnent la formation de structures chromatiniennes d' ordre supérieur . L' assemblage et le désassemblage des nucléosomes impliquent des protéines appelées chaperonnes qui prennent en charge les dimères d' histone . L' insertion de variants d' histone implique des chaperonnes spécifiques . Certaines propriétés du nucléosome sont importantes pour son assemblage et son désassemblage : i . Le tétramère ( H3-H4 ) 2 organise les 80 paires de bases centrales de l' ADN , alors que les ~ 40 pb latérales sont fixées plus faiblement par les dimères H2A-H2B , avec seulement une petite contribution de l' histone H3 . ii . Le dimère ( H2A-H2B ) établit avec le tétramère ( H3-H4 ) 2 des contacts étroits qui ne sont cependant pas suffisants pour stabiliser l' association des complexes en absence d' ADN ( Park and Luger , 2008 ) . iii . Étant donné l' association étroite des dimères ( H2A-H2B ) et ( H3-H4 ) , il est très probable que ces complexes soient les unités de bases utilisées lors de l' assemblage et du désassemblage des nucléosomes . L' analyse de la stoechiométrie du complexe formé par la chaperonne ASF et les histones H3 et H4 révèle d' ailleurs que c' est un dimère de ( H3-H4 ) qui est pris en charge ( English et al. , 2005 ) . L' assemblage des nucléosomes procède par une étape de dépôt des dimères ( H3-H4 ) sur l' ADN suivie par une étape de dépôt des dimères ( H2A-H2B ) . Cet assemblage peut être déstabilisé de deux façons : en modifiant l' interface entre les dimères ( H2A-H2B ) et le tétramère ( H3-H4 ) 2 ou bien en modifiant l' interface entre les histones et l' ADN . c . Les histones i . Les histones de coeur Les histones qui forment l' octamère du nucléosome sont appelées histones de coeur . Ce sont les histones H2A , H2B , H3 et H4 . Ces petites protéines basiques sont très conservées au cours de l' évolution . Elles se composent d' un domaine central globulaire et d' extrémités N et C terminales non structurées . Il existe des formes variables de ces histones qui donnent à la chromatine des propriétés particulières . Nous examinerons plus loin les propriétés de ces variants . La région la plus conservée des histones est leur domaine central , structuré en un motif appelé « histone fold » qui comprend trois hélices séparées par deux boucles ( Arents et al. , 1991 ) et qui permet la formation des dimères H2A-H2B et H3-H4 [ Figure 2 ] . Les extrémités N et C terminales des histones , appelées queues , sont plus variables que les domaines centraux et sont dépourvues de structure secondaire . Elles sont particulièrement riches en résidus lysine et arginine . L' hypothèse la plus intuitive est que ces résidus chargés positivement établissent des interactions avec les phosphates de l' ADN , chargés négativement , et stabilisent ainsi la position de celui -ci sur le nucléosome . Il a en effet été montré que les queues des histones influencent l' accessibilité de l' ADN nucléosomal ( Lee et al. , 1993 ) . Mais il est prédit que leur effet sur la respiration de la particule est faible ( Mutskov et al. , 1998 ; Polach et al. , 2000 ) . Les queues des histones sont la cible de nombreuses modifications post-traductionnelles dont nous allons voir l' importance pour la fonction de la chromatine . ii . Les histones internucléosomales ou histones de liaison L' histone canonique H1 ou un de ses variants peut s' associer avec la région de l' ADN qui lie deux nucléosomes adjacents . Ces histones ne présentent pas d' homologie structurale avec les histones de l' octamère et doivent leur nom au fait qu' elles sont associées in vivo avec les nucléosomes dans un rapport stoechiométrique 1 : 1 . La structure de H1 présente trois domaines : deux extrémités N et C terminales non structurées sujettes à plusieurs modifications post-traductionnelles ( Godde and Ura , 2008 ) et une partie centrale , globulaire et conservée , dont la structure en « wing-hélice » à été déterminée pour la première fois en 1987 pour le variant héritrocitaire de poulet H5 ( Clore et al. , 1987 ) [ Figure 3 ] . Récemment les sites d' interactions de l' histone H 1 ° avec le nucléosome ont été déterminés par une analyse de mutagenèse dirigée ( Brown et al. , 2006 ) . Cela a permis aux auteurs d' élaborer un modèle de l' interaction de l' histone de liaison avec le nucléosome [ Figure 3 ] . In vitro l' histone H1 stabilise le nucléosome en stabilisant sa respiration et en rendant son glissement plus difficile ( Pennings et al. , 1994 ; Varga-Weisz et al. , 1995 ) . L' histone de liaison influence également le degré de compaction de la chromatine ( Thoma et al. , 1979 ; Thoma et al. , 1983 ) . Son retrait conduit à la décompaction ( Fan et al. , 2005 ) . A l' inverse , elle prévient également la formation de structures compactes telles que celle des chromosomes mitotiques ( Khochbin , 2001 ) . III . Structures d' ordre supérieur On parle d' ordre supérieur pour la compaction de la chromatine lorsque des structures se forment par repliement de la structure en « collier de perles » [ Figure 4 ] . Ces structures peuvent être perturbées par des variations de charges au niveau de la surface de l' octamère d' histone ou sur des queues des histones ou encore par l' ajout d' autres protéines à la structure de la chromatine . a . La fibre de 30 nm Une fibre de 30 nm de diamètre se forme par enroulement du nucléofilament ( Tremethick , 2007 ) pour une revue sur la fibre de 30 nm ) . Pour cette fibre , deux modèles sont actuellement discutés : l' un est issu d' observations par microscopie électronique sur des nucléofilaments de longue taille et contenant l' histone H1 . Il propose une structure en solénoïde ( hélice à un point de départ ) ( Robinson et al. , 2006 ) . L' autre provient de l' observation de la structure cristallographique à 9 Å d' une fibre contenant 4 nucléosomes ( Schalch et al. , 2005 ) et de données de réticulation chimique sur une fibre de 12 nucléosomes ( obtenues par le même laboratoire ) ( Dorigo et al. , 2004 ) . Il propose une hélice en zig-zag à deux points de départ [ Figure 5 ] . Le modèle du solénoïde est soutenu par le fait que le diamètre de la fibre n' augmente pas linéairement avec la longueur de l' ADN de liaison et par plusieurs résultats de modélisation par dynamique moléculaire ( Beard and Schlick , 2001 ; Katritch et al. , 2000 ) . Les auteurs de ce modèle proposent que la divergence entre les théories vient du fait que , contrairement aux fibres observées par microscopie électronique , la fibre observée par cristallographie est courte et ne contient pas l' histone de liaison H1 . Ils font l' hypothèse que les deux structures co-existent dans le noyau et correspondent à différents états fonctionnels de la chromatine . ( Robinson and Rhodes , 2006 ) . Nous avons vu que la fibre de 30 nm est stabilisée par l' histone de liaison H1 / H5 . Elle dépend également des interactions entre nucléosomes adjacents . Notamment d' une interaction entre les résidus 14 à 25 de la queue N terminale de l' histone H4 avec une région chargée négativement portée par le dimère H2A-H2B d' un nucléosome adjacent . L' importance de cette interaction avait été présentie à cause de son existence dans la structure cristalline du nucléosome ( Luger and Richmond , 1998a ; Luger et al. , 1997 ) . Elle a été confirmée par des analyses de réticulation chimique ( Dorigo et al. , 2004 ) qui montrent que les résidus 14 à 19 de H4 sont essentiels à la compaction . Il a de plus été montré que la simple acétylation de la lysine 16 de H4 , comme la délétion de la queue H4 , empêche la formation de la fibre de 30 nm alors que les résidus 1 à 13 de H4 n' influent pas sur cette compaction ( Shogren-Knaak et al. , 2006 ) . Une étude récente suggère que c' est la neutralisation de la région acide portée par le dimère H2A-H2B plus que le lien créé par l' interaction avec la queue H4 qui favorise la formation de structures d' ordre supérieur ( Chodaparambil et al. , 2007 ) . Il a de plus été montré que cette région acide peut servir de surface d' interaction pour la protéine LANA du virus KSHV ( Barbera et al. , 2006 ) . b . Repliements de la fibre de 30 nm Les fibres de 30 nm peuvent subir des compactions supplémentaires pour former des fibres allant de 60 à 300 nm . Pour atteindre la compaction des chromosomes mitotiques , des boucles de 50 000 à 100 000 bases se forment dans la fibre de 30 nm et sont fixées par des protéines qui forment le squelette du chromosome . La structure du chromosome pourrait être formée par trois repliements successifs : une fibre de 60 - 80 nm s' enroulerait pour former une fibre de 100 - 130 nm qui s' enroulerait encore pour former la structure de 200 - 300 nm de large observée en métaphase ( voir la revue Belmont , 2006 ) . La structure précise de ces formes compactes de la chromatine n' est pas connue . Mais la formation de structures compactes a notamment été attribuée à des protéines ayant un rôle architectural , qui se comportent comme des agents de réticulation entre nucléosomes ( McBryant et al. , 2006 ) . Les facteurs de remodelage ATP-dépendant pourraient également être impliqués . B . Dynamique de la structure chromatinienne Grâce aux MPT et aux domaines de reconnaissance des MPT , la chromatine est capable de recruter de façon spatio-temporelle précise les facteurs qui assurent son remodelage : facteurs de remodelage ATP-dépendant , chaperonnes qui assurent le remplacement des histones canoniques par des variants , enzymes responsables de l' ajout ou du retrait d' une MPT ... On peut distinguer deux types de modifications qui affectent la structure de la chromatine : i . Celles qui modifient le relief électrostatique du nucléosome . Elles influencent les interactions du nucléosome et de l' ADN , les interactions entre nucléosomes et les interactions avec les autres protéines . Cela suppose que les nucléosomes soient accessibles aux machineries responsables de ces modifications . Elles sont donc probablement réduites dans les régions où la chromatine est très compacte . Il s' agit principalement des modifications post-traductionnelles et de l' intégration de variants d' histone . ii . Celles qui impliquent une action extérieure . Il s' agit des complexes de remodelage ATP-dépendant ou des protéines de liaison ayant un rôle architectural . Ce type d' intervention modifie la structure de la chromatine sans modifier sa composition initiale . I. Le remodelage ATP-dépendant Les complexes ATP-dépendant de remodelage de la chromatine contiennent une sous-unité catalytique qui permet de les classer en cinq familles chez les organismes eucaryotes ( Swi / Snf , Iswi , NURD / Mi 2 / CHD , Ino 80 et SWR1 ) et au moins une autre sous-unité . Ils portent des domaines de reconnaissance des MPT ( bromodomaine , PHD finger , chromodomaine ) et d' autres domaines conservés de fonctions encore inconnues . Ils sont responsables de plusieurs types de modifications de la structure chromatinienne : glissement des nucléosomes , désorganisation de l ' espacement des nucléosomes au niveau des promoteurs , assemblage des nucléosomes et organisation des particules de façon régulière sur le nucléofilament ( voir les revues Becker and Hörz , 2002 ; Choudhary and Varga-Weisz , 2007 ; Smith and Peterson , 2005 ) . Les complexes de la famille Iswi et Swi / Snf catalysent par exemple le glissement de l' ADN sur l' octamère d' histone par un mécanisme similaire dans lequel une boucle d' ADN est soustraite à l' interaction des histones et se propage autour de la particule ( Strohner et al. , 2005 ; Zhang et al. , 2006 ; Zofall et al. , 2006 ) . Les complexes de remodelage ATP-dépendant coopèrent à l' occasion avec des chaperons d' histones ( Angelov et al. , 2006 ; Lorch et al. , 2006 ; Walfridsson et al. , 2007 ) ou possèdent eux-mêmes une activité de chaperonne ( Loyola et al. , 2001 ) . De plus , plusieurs observations semblent indiquer que ces complexes sont impliqués dans la régulation des structures chromatiniennes d' ordre supérieur ( Maier et al. , 2008a ; Maier et al. , 2008b ) . II . Modifications post-traductionnelles des histones ( MPT ) a . Généralités Les histones portent de nombreux sites de modifications post-traductionnelles . Celles -ci participent à la régulation de la compaction et de l' accessibilité de la chromatine . Elles assurent également le recrutement sur la chromatine de protéines spécifiques de façon spatio-temporelle précise . Les histones peuvent être mono , di ou tri-méthylés sur les lysines et les arginines , acétylées sur les lysines , phosphorylées sur les sérines , les thréonines et les tyrosines , sumoylées sur les lysines , ubiquitinées sur les lysines , ADP ribosylées sur les glutamates ; les arginines peuvent être déiminées , les prolines peuvent subir une isomérisation [ Figure 6 ] ( voir la revue Kouzarides , 2007 ) . Les queues des histones de coeur , très accessibles , portent l' essentiel des sites de modification connues à ce jour [ Figure 7 ] mais elle peuvent aussi toucher les domaines centraux des histones ( Cosgrove , 2007 ) et les histones de liaison ( Godde and Ura , 2008 ) . L' identification des enzymes responsables de ces modifications a énormément progressé ces dix dernières années . Des enzymes responsables du dépôt et du retrait ont été identifiées pour chacune d' elles ( sauf pour le retrait de la méthylation des arginines qui est pourtant observé ) . Ainsi , les MTP sont toutes réversibles et dynamiques . L' acétylation est régulée par l' équilibre qui existe entre l' acétylation et la désacétylation , catalysées respectivement par les histones acétyl-transférases à partir de l' acétyl-coenzymeA et les histones désacétylases . Une demi-vie de l' ordre de la minute a été mesurée pour un tel équilibre . Les acétyl-transférases ont une spécificité réduite puisqu' elles modifient plusieurs lysines différentes . Elles peuvent être divisées en trois familles ( GNAT , MYST et CBP / P 300 ) selon leurs identités de séquence ( Sterner and Berger , 2000 ) . Les MPT affectent la charge et l' encombrement stérique des résidus ( cas de l' acétylation et de la phosphorylation en particulier ) . Dans les domaines centraux des histones , elles pourraient altérer les interactions avec l' ADN et ainsi réguler la mobilité du nucléosomes ( Cosgrove , 2007 ) . L' acétylation d' une lysine du domaine de coeur de H3 ( K56 ) a d' ailleurs été récemment identifiée ( Han et al. , 2007 ) . Cette lysine fait face au sillon majeur de l' ADN et son acétylation affecte probablement l' interaction avec l' ADN . De même , les interactions qu' établissent les queues des histones avec l' ADN ou les nucléosomes adjacents sont inévitablement modifiées par les changements électrostatiques induits par les MPT . Ainsi , il a été montré que l' hyperacétylation empêche la formation de la fibre de 30 nm ( Tse et al. , 1998 ) et qu' elle réduit les interactions entre les queues des histones et l' ADN ( Mutskov et al. , 1998 ) . La lysine 16 de H4 semble avoir un statut particulier . La région de H4 qui la contient ( résidus 14 - 19 ) est essentielle à la formation de la fibre de 30 nm ( Dorigo et al. , 2004 ) et , de façon spectaculaire , sa seule acétylation est capable d' inhiber la formation de cette fibre ( Shogren-Knaak et al. , 2006 ) . D' autre part son acétylation apparaît comme un marqueur garant de la conservation des frontières entre l' hétérochromatine et l' euchromatine ( Ladurner et al. , 2003 ) . Enfin , il a été montré que l' abolition de l' acétylation sur les lysines de la queue H4 ( par mutation des lysines 5 , 8 , 12 et 16 ) induit une réduction de la transcription selon un mode graduel et non spécifique en ce qui concerne les lysines 5 , 8 et 12 alors que l' abolition de l' acétylation de la lysine 16 touche des gènes particuliers ( Dion et al. , 2005 ) . Cependant la fonction principale des MTP réside probablement dans le recrutement de protéines ou de complexes protéiques spécifiques en un endroit et à un moment défini . Des modules de lecture des MPT ( bromodomaine , PHD finger , chromodomaine , WD40 , ... ) capables de discriminer la modification et son contexte [ Figure 6 ] sont en effet présents dans la structure d' un grand nombre de protéines impliquées dans le contrôle des fonctions de la chromatine telles que les acétyl-transférases , les déméthylases ou les complexes ATP-dépendant de remodelage de la chromatine ( voir la revue Taverna et al. , 2007 ) . Ces domaines constituent les modules de lecture d' un code constitué par les différentes combinaisons de MTP des histones et qu' il est convenu d' appeller le code histone ( Strahl and Allis , 2000 ) . III . Intégration de variants d' histones Contrairement aux histones canoniques , l' expression des variants d' histones n' est pas limitée à la phase S du cycle cellulaire . Des variants d' histones pour H1 , H2A , H2B et H3 ont été identifiés chez la plupart des organismes eucaryotes . Aucun variant n' a été identifié pour H4 . Certains sont exprimés dans tous les types cellulaires , ils sont dits ubiquitaires [ Tableau 1 ] . D' autres ont une expression tissu-spécifique . Nous étudierons les variants spécifiques du testicule au chapitre concernant la spermatogenèse . Tableau 1 : Variants d' histone ubiquitaires identifiés à ce jour Les variants ont des degrés d' identité de séquence variables , forte dans le cas de H2A. X ( 82 % ) et H3 . 3 ( 96 % ) , faible dans le cas de H2A.Bbd ( 40 % ) ; les identités de séquence des autres variants se situent autour de 60 % ( Luger , 2006 ) . La séquence des variants est en général plus conservée encore que celle des histones canoniques , ce qui témoigne de l' importance de leurs fonctions . ( voir les revues Bernstein and Hake , 2006 ; Henikoff and Ahmad , 2005 ; Kamakaka and Biggins , 2005 ) . Les différences existant entre les séquences des histones canoniques et celles des variants entraînent des modifications de la surface de l' octamère . La stabilisation de l' ADN du nucléosome peut ainsi être modifiée . Cela a notamment été mis en évidence pour H2A.Z ( Park et al. , 2004 ) et H2A.Bbd . Cette déstabilisation pourrait se traduire in vivo par un désassemblage du nucléosome plus ou moins facile , comme cela a été mis en évidence pour H2A.Z. La modification de la surface de l' octamère peut également avoir des conséquences sur les interactions entre nucléosomes et donc sur la formation de structures compactes de la chromatine , c' est le cas pour H2A.Z ( Fan et al. , 2004 ) . Les variants des histones sont également impliqués dans la régulation du glissement et du remodelage ATP-dépendant des nucléosomes ( Flaus et al. , 2004 ; Santisteban et al. , 2000 ) . Enfin les variations de séquence , notamment au niveau de leurs extrémités N et C terminales , en modifiant les sites de modification post-traductionnelles , sont susceptibles de modifier le code histone porté par les nucléosomes . L' insertion des variants d' histone dans les nucléosomes implique des chaperonnes probablement spécifiques ( Kusch and Workman , 2007 ) , comme c' est le cas pour H2A.Z ( Luk et al. , 2007 ) . a . Variants de H2A Les variants de H2A participent à la constitution de structures chromatiniennes dont les propriétés sont particulières ( voir les revues ( Boulard et al. , 2007 ; Chakravarthy et al. , 2004 ) ) : H2A. X a un rôle de senseur des cassures doubles brins de l' ADN qui implique sa phosphorylation ( Redon et al. , 2002 ; Stucki et al. , 2005 ) . MacroH 2A participe à la constitution de la chromatine du chromosome X inactif des cellules de mammifère ( Costanzi and Pehrson , 1998 ) . Il possède une fonction de répression de la transcription probablement due à l' inhibition du remodelage de la chromatine ( Angelov et al. , 2003 ; Doyen et al. , 2006 ) . Ce variant contient un domaine additionnel ( le domaine Macro ) qui constitue environ les deux tiers de la protéine . MacroH 2A pourrait réguler l' ADP ribosylation de l' ADN grâce à une activité catalytique portée par son domaine Macro ( Kustatscher et al. , 2005 ; Ladurner , 2003 ) . La structure du domaine Macro et celle d' un nucléosome contenant le domaine central de MacroH 2A ont été résolues ( Chakravarthy et al. , 2005a ) . Elles montrent que la particule de coeur du nucléosome est très similaire à celle d' un nucléosome classique . La même étude montre que le domaine Macro pourrait servir à recruter des protéines ayant une activité histone désacétylase . H2A.Z est impliqué dans une série de fonctions différentes , voire contradictoires ( Zlatanova and Thakar , 2008 ) . Le variant participe notamment à l' assemblage de la chromatine des centromères ( Greaves et al. , 2007 ) . La structure d' un nucléosome contenant ce variant a été résolue et révèle que la structure de la particule de coeur du nucléosome est très conservée malgré la divergence des séquences du variant et de H2A ( Suto et al. , 2000 ) . Toutes les interactions entre l' histone et l' ADN sont conservées . La différence majeure consiste en l' élargissement par deux résidus d' une région acide de la surface du nucléosome . Cette région est impliquée chez H2A dans une interaction avec la queue de l' histoneH 4 ( Dorigo et al. , 2004 ) . De façon très intéressante , la capacité du variant d' induire in vitro ( en présence de la protéine HP1 ) la formation de la fibre de 30 nm dépend de ces deux résidus qui étendent la région acide ( Fan et al. , 2004 ) . H2A.Bbd diminue la stabilité du nucléosome ( Gautier et al. , 2004 ) . Son intégration produit des structures chromatiniennes plus étendues et incapables de former une fibre de 30 nm . Cela pourrait être expliqué par l' absence chez ce variant de la région acide impliquée dans l' interaction entre H2A et la queue H4 ( Zhou et al. , 2007 ) . b . Variants de H3 CENP-A est un déterminant majeur des régions centromériques dont il pourrait déterminer l' identité ( Sullivan and Karpen , 2001 ) . Son extrémité N terminale est très différente de celle des autres histones H3 et porte probablement un code histone particulier . Les variants H3 . 1 , H3 . 2 , H3 . 3 ne diffèrent de H3 que par quelques acides-aminés . H3 . 3 a été identifiée comme une histone de remplacement enrichie en MTP associées à l' activation de la transcription alors que H3 . 2 est enrichie en MTP associées à la répression de la transcription ( Hake and Allis , 2006 ) . IV . Protéines de liaison La capacité d' induire la formation de structures compactes de la chromatine a été mise en évidence pour un certain nombre de protéines . L' histone de liaison H1 peut être considérée comme l' une d' entre elles puisqu' elle induit la formation de la fibre de 30 nm in vitro ( Woodcock , 2006 ) . D' autres protéines , moins abondantes que l' histone H1 agissent comme agent de réticulation et permettent l' assemblage de structures d' ordre supérieur particulières [ Figure 8 ] ( McBryant et al. , 2006 ) . Ce sont les protéines : HP1 ( Heterochromatin-associated Protein 1 ) de drosophile et ses homologues qui forment des dimères en solution ( Nielsen et al. , 2001 ) . Elles possèdent notamment un chromodomaine qui fixe la modification H 3 K 9 me ( Thiru et al. , 2004 ) . HP1 se lie préférentiellement à la chromatine contenant le variant H2A.Z ( Fan et al. , 2004 ) . Les complexes PcG ( Polycomb Group protein ) sont impliqués dans le maintien de l' état silencieux de certains gènes . Polycomb comporte un chromodomaine qui reconnaît la modification H 3 -K 27 me 3 ( Fischle et al. , 2003 ) . La compaction de la chromatine provoquée par le complexe PRC1 peut être visualisée par microscopie électronique ( Francis et al. , 2004 ) . Cette étude permet de conclure que PRC1 porte au moins deux sites d' interaction avec les nucléosomes . La protéine MENT ( Myeloid and Erythroid Nuclear Termination stage specific protein ) aviaire interagit avec l' ADN par l' intermédiaire de domaines particuliers pour former des interactions entre nucléofilaments ( Springhetti et al. , 2003 ) . MeCP 2 ( Methyl-CpG binding protein 2 ) se lie au dinucléotides CpG methylés de l' ADN . Elle est capable de recruter des histones désacétylases , d' induire une répression locale de la transcription et provoque une forte compaction de la chromatine ( Young et al. , 2005 ) . C . Compaction de la chromatine pendant la spermiogenèse I. La spermatogenèse en bref La spermatogenèse est le procédé par lequel sont produits les gamètes mâles ( les spermatozoïdes ) . Les étapes successives se font de l' épithélium des tubes séminifères vers leur lumière où sont libérés les spermatozoïdes [ Figure 9 ] . Ils vont ensuite terminer leur maturation dans l' épididyme . Les cellules germinales souches , appelées spermatogonies , sont localisées à proximité de l' épithélium séminifère . Les spermatogonies de type A prolifèrent par mitose afin d' assurer leur renouvellement et certaines se différencient en spermatogonies de type B. Les spermatogonies de type B sont caractérisées par plusieurs nucléoles et une forte activité transcriptionnelle , permettant de synthétiser les protéines nécessaires à l' étape de méiose qui va suivre . Les divisions de méiose produisent quatre cellules haploïdes , appelé spermatides à partir d' une cellule diploïde . La prophase de la première division méiotique est très longue , elle commence par la duplication de l' ADN et se termine par la ségrégation des chromosomes homologues dans les spermatocytes secondaires , par conséquent haploïdes . Les spermatocytes secondaires traversent ensuite une interphase très courte , sans répliquer leur ADN et subissent alors une division de mitose conventionnelle , avec séparation des chromatides soeurs de chaque chromosome . Cette division donne naissance aux spermatides . Commence alors la phase de différenciation terminale appelée spermiogenèse qui s' achève par la libération des spermatozoïdes dans la lumière du tube séminifère . Tout au long de la spermatogenèse , il existe entre les cellules en voie de différenciation des ponts cytoplasmiques permettant la diffusion des molécules . Trois transformations majeures s' opèrent au cours de la spermiogenèse : i . l' appareil de Golgi se différencie en granules à fonction semblable à celle des lysosomes qui donneront naissance à l' acrosome . ii . Le flagelle se forme et l' excès de cytoplasme est évacué sous forme de corps résiduels . iii . La dernière transformation concerne la compaction de la chromatine : c' est elle qui va nous intéresser . Au cours de la spermiogenèse , le noyau des spermatides s' allonge et la chromatine se condense en une structure très compacte . Ce phénomène a été observé dans la plupart des espèces étudiées . Le début du remodelage coïncide avec une hyperacétylation des histones de coeur ; celle -ci sera suivie d' une disparition quasi totale des histones ( Hazzouri et al. , 2000 ; Meistrich et al. , 1992 ) . Elles seront remplacées par de petites protéines basiques , spécifiques des testicules , appelées protéines de transition ( TP1 / 2 ) ( Meistrich et al. , 2003 ) . Les protéines de transition seront elles-mêmes remplacées par des protéines spécifiques du liquide séminal appelées protamines ( Lewis et al. , 2003 ) . L' invalidation des gènes TP1 / 2 chez la souris n' affecte pas les premières étapes de la condensation de la chromatine ( Shirley et al. , 2004 ; Zhao et al. , 2004 ) . Celles -ci semblent être largement dépendantes de la protéine Brdt ( Govin et al. , 2006 ) . II . Modifications de la chromatine au cours de la spermiogenèse Nous allons étudier principalement les modifications ayant lieu au cours de la spermiogenèse [ Figure 10 ] et qui sont donc susceptibles d' intéresser la compaction de la chromatine à laquelle participe la protéine Brdt . Pour une description plus complète de ces phénomènes , voir les revues ( Caron et al. , 2005 ; Govin et al. , 2004 ) . a . Intégration de variants d' histone La chromatine qui sert de substrat au remplacement des histones et à la compaction qui suit contient une grande variété de variants d' histones . Certains sont spécifiques du testicule et d' autres sont ubiquitaires ( Govin et al. , 2004 ; Govin et al. , 2007 ) [ Tableau 2 ] . Les variants ubiquitaires , dont la présence correspond aux phases de méiose et aux premiers stades de la spermiogenèse ne sont probablement pas directement impliqués dans le phénomène de compaction des stades tardifs . Nous allons nous limiter à examiner la fonction possible des variants spécifiques . Tableau 2 : Variants d' histone identifiés chez le rat ou la souris ( chez l' homme ) i . Variants des histones de liaison Le variant H 1t est détecté du stade des spermatocytes à celui des spermatides rondes à allongées . Il constitue dans ces cellules jusqu'à 55 % des histones de liaison totales ( Drabent et al. , 1996 ; Steger et al. , 1998 ) . Des données expérimentales in vitro montrent que H 1t est moins fortement associé aux nucléosomes et qu' il a des capacités de condensation de la chromatine amoindries par rapport aux autres types d' histones de liaison présentes chez le rat ( De Lucia et al. , 1994 ; Khadake and Rao , 1995 ) . Cela suggère que ce variant puisse faciliter la décompaction de la chromatine pour améliorer son accès à d' autres facteurs de remodelage . Contrairement à H 1t , les variants HILS1 et H 1 t 2 sont exclusivement présents pendant la spermiogenèse . H 1 t 2 est détecté à partir du stade des spermatides rondes jusqu'au stade des spermatides condensées . Il est localisé dans la partie apicale du noyau ( sous l' acrosome ) ( Martianov et al. , 2005 ) . Le variant HILS1 a été exclusivement détecté dans les spermatides en condensation ( stades 9 à 15 ) ( Yan et al. , 2003 ) . Les auteurs de cette étude proposent qu' il soit impliqué dans la compaction de la chromatine dont les histones ont déjà été remplacées par des protéines de transition . ii . Variants des histones de coeur Variants de H2A Les queues N terminales des variants H2AL1 et H2AL2 sont sujettes à de nombreuses variations . Elles sont plus réduites dans le cas de TH2A. Dans les deux cas les modifications touchent des résidus porteurs de MTP ou des résidus adjacents . Elles influencent donc potentiellement des fonctions importantes . Les variants de H2A présentent de plus plusieurs mutations dans leur domaines centraux et C terminaux . La région C terminale chargée négativement , connue pour être impliquée dans l' interaction avec la queue H4 et la formation de structures chromatiniennes d' ordre supérieur , est d' ailleurs concernée puisqu' elle est quasiment absente chez H2AL1 / L2 [ Figure 11 ] . Ces variants ont été identifiés principalement dans les zones péricentriques des spermatides condensées et dans les spermatozoïdes . Ils dimérisent préférentiellement avec le variant TH2B et forment , par association avec le tétramère ( H3-H4 ) 2 , des nucléosomes peu stables ( Govin et al , 2007 ) . Variants de H2B Les variants de H2B sont assez conservés dans leurs parties centrales et C terminales . Les queues N terminales sont en revanche très variables . TH2B est la forme la plus abondante de l' histone H2B dans les spermatides rondes et allongées , elle disparaîtra progressivement jusqu'à n' être plus détectée dans les spermatozoïdes ( Govin et al. , 2007 ; van Roijen et al. , 1998 ) . Sa fonction est inconnue . Contrairement à elle , TSH2B , son homologue chez l' homme est détectée dans les spermatozoïdes matures et pourrait être impliquée dans les premières étapes du développement de l' oeuf ( Singleton et al. , 2007 ) . H2BFWT est un variant spécifique du testicule identifié chez l' homme . Il pourrait être associé aux régions télomériques ( Churikov et al. , 2004 ) . Sa présence n' affecte pas la stabilité des nucléosomes . Il est en revanche incapable de recruter des facteurs de condensation et de participer à l' assemblage des chromosomes mitotiques ( Boulard et al. , 2006 ) . H2BFWT pourrait être un marqueur épigénétique important pour l' identité des régions télomériques . Sa partie N terminale est extrêmement différente de celle de H2B. De façon générale il présente une similarité faible avec H2B et TH2B ou TSH2B . Au contraire des variants de H2A , l' incorporation de TSH2B et H2BFWT dans des nucléosomes ne modifie pas la stabilité de ceux -ci ( Boulard et al. , 2006 ; Li et al. , 2005 ) . Le variant H2BL1 a été identifié exclusivement dans les spermatides condensées et reste présent , contrairement à TH2B , dans les spermatozoïdes matures ( Govin et al. , 2007 ) . Ce variant pourrait remplacer TH2B dans les stades tardifs de la spermatogenèse . Variant de H3 H 3t est peu différent de H3 . Sa queue N terminale est notamment conservée à l' exception de la mutation A24V. Il apparaît dans les spermatides condensées ( stades 12 - 16 ) où il pourrait remplacer H3 pour faire disparaître la tri-métylation H3K9 ( Govin et al. , 2007 ) . b . Modifications post-traductionnelles Nous allons particulièrement nous intéresser aux modifications qui touchent la chromatine des cellules post-méiotiques . Celles -ci sont potentiellement impliquées dans le phénomène de compaction de la chromatine qui a lieu au cours des phases terminales de la spermiogenèse ( stades 12 à 16 ) qui implique Brdt [ Figure 10 ] . i . Acétylation Chez plusieurs espèces il se produit au cours de la spermiogenèse une vague d' acétylation qui précède le remplacement des histones ( Govin et al. , 2004 ) . L' acétylation survient de façon indépendante d' une activité de réplication ou de transcription et semble plutôt être liée au remplacement des histones qui la suit . En effet les histones ne sont pas remplacées dans les espèces chez lesquelles la chromatine ne subit pas d' hyperacétylation ( Kennedy and Davies , 1981 ) . Des études in vitro suggèrent que l' acétylation des histones pourrait faciliter leur remplacement par des protamines ( Oliva et al. , 1987 ) . Il a été montré que l' histone H4 est fortement acétylée au cours des stades 9 à 12 chez le rat ( Meistrich et al. , 1992 ) et au cours des stades 9 à 11 chez la souris ( Hazzouri et al. , 2000 ) . Par fractionnement des différents types de spermatides , une étude montre que les histones de coeur sont principalement acétylées sur H4 et H2A et que l' acétylation de H4 touche les lysines K5 , K8 et K12 mais pas K16 ( Govin et al. , 2006 ) . La dynamique de l' acétylation de H4 a été suivie dans les spermatides grâce à la technique d' immunofluorescence en utilisant un anticorps spécifique de la queue H4 tétra-acétylée : Les spermatides rondes ( stades 2 - 6 ) sont peu colorées par l' anticorps . Dans les spermatides en cours d' élongation ( stade 8 ) , l' acétylation de H4 augmente , elle est distribuée de façon homogène dans l' ensemble du noyau . Au stades 9 - 10 , le signal diminue , sauf dans un domaine central qui s' avère correspondre à la chromatine constitutive péricentrique . Au stade 11 , l' acétylation de H4 a complètement disparu ( Govin et al. , 2007 ) . ii . Autres modifications post-trascriptionnelles potentiellement impliquées Des formes ubiquitinées des histone H2A , H2A.Z , H2B , H3 , TH3 sont détectées chez le rat dans les spermatides allongées ( Baarends et al. , 1999 ; Chen et al. , 1998 ) . Cette ubiquitination pourrait être impliquée dans le phénomène de dégradation des histones observé à la fin de la spermiogenèse . Une autre voie de dégradation , associée à l' acétylation des histones est également étudiée . La phosphorylation de la sérine 1 de H4 , a été identifiée dans les gamètes mâles en voie différenciation chez la levure , la drosophile et la souris . Sa présence est détectée chez la souris pendant les phases post-méiotiques et disparaît au début de l' allongement des spermatides à un stade qui correspond à l' hyper-acétylation des histones ( Thèse J. Govin , 2006 ) . Chez la levure , en l' absence de cette modification , la compaction de la chromatine est réduite et le volume du noyau est augmenté ( Krishnamoorthy et al. , 2006 ) . Ainsi , la modification H4S1P semble être impliquée dans la compaction de la chromatine qui a lieu au cours de la spermatogenèse . Aucune explication directe n' a été publiée à ce jour sur la façon dont cette modification intervient . Cependant H4S1P inhibe in vitro l' activité histone acétyl-transférase des enzymes EsaI et NuA 4 ( Utley et al. , 2005 ) . Ce qui laisse supposer que cette phosphorylation régule l' acétylation de H4 dans les spermatides . D . La protéine Brdt I. Fonctions Brdt est une protéine spécifiquement exprimée dans les testicules ( Shang et al. , 2004 ) et dans les ovocytes ( Paillisson et al. , 2007 ) . Dans les cellules germinales mâles , son ARN messager est détecté dans les spermatocytes et dans les spermatides allongées ( Govin et al. , 2006 ) . La protéine appartient à la famille des protéines BET . Ces protéines comportent toutes dans leurs parties N terminales deux bromodomaines séparés par une région de liaison ( longue de 100 résidus environ dans le cas de Brdt ) . Son expression dans les spermatides au moment de la compaction de la chromatine et la présence de deux bromodomaines dans sa séquence primaire ont incité l' équipe de S. Kochbin à étudier la fonction de cette protéine encore inconnue . L' équipe a montré par immunofluorescence que la partie N terminale de la protéine contenant les deux bromodomaines et leurs régions adjacentes ( ? C-Brdt , résidus 1 à 440 ) est capable d' induire la compaction de la chromatine acétylée lorsqu' elle est surexprimée dans des cellules somatiques . Cette capacité est conservée lorsque des noyaux purifiés sont incubés avec la protéine . La compaction induite est dépendante de l' acétylation de la chromatine et de l' intégrité des deux bromodomaines ( avec une abolition de la compaction plus drastique pour les mutants dont BD1 a été inactivé ) et de leurs régions adjacentes ( résidus 1 - 13 et 392 - 443 ) mais indépendante de la présence d' ATP . Enfin , cette étude montre par co-purification que la partie N terminale de la protéine ( ? C- Brdt ) se lie à la queue tétra-acétylée de l' histone H4 et que l' inactivation de l' un ou l' autre des bromodomaines est suffisant pour abolir cette interaction ( Pivot-Pajot et al. , 2003 ) . Des études complémentaires par immunofluorescence montrent que la présence de Brdt et de l' hyperacétylation de H4 suivent parfaitement la même évolution spatio-temporelle . Le signal lumineux correspondant à Brdt est faible dans les spermatides rondes , il est très intense dans les spermatides en début d' allongement puis diminue mais persiste plus longement dans les régions péricentriques où subsiste également l' acétylation . L' évolution de l' acétylation de H4 , détaillée dans le paragraphe précédent , est parfaitement similaire ( Govin et al. , 2007 ; Govin et al. , 2006 ) . Brdt est également capable d' induire le relargage de l' histone de liaison H1 ( Govin et al. , 2006 ) connue pour empêcher la formation de structures compactes de la chromatines ( Khochbin , 2001 ) . On peut noter que ce relargage pourrait aussi être facilité par l' acétylation des histones ( Misteli et al. , 2000 ; Perry and Annunziato , 1989 ) . Cette observation laisse envisager que Brdt soit impliqué dans l' incorporation du variant HILS1 de l' histone H1 . Ce variant est spécifiquement exprimé dans les spermatides en condensation . Enfin , Brdt co-localise avec les régions péricentriques de la chromatine . Dans ces régions les histones ne sont pas remplacées par les protéines de transition et l' hyperacétylation de H4 persiste jusqu'à des stades tardifs de la spermiogenèse . Brdt pourrait être impliqué dans la protection de l' acétylation ainsi que dans la conservation des histones dans ces régions ( Govin et al. , 2007 ) . L' importance fonctionnelle de Brdt et de son premier bromodomaine en particulier pour le bon déroulement de la spermiogenèse a été mise en évidence par plusieurs études différentes : i . L' inactivation de BD1 a un effet plus prononcé sur la compaction de la chromatine que celle de BD2 ( Pivot-Pajot et al. , 2003 ) . ii . Chez l' homme , un polymorphisme de séquence qui entraîne une mutation dans le premier bromodomaine de Brdt ( mutation K62Q de BD1 ) a été identifié à l' état homozygote uniquement chez des individus infertiles . Cette mutation affecte la stabilité de l' association de Brdt et de la chromatine acétylée ( Rousseau et al. , article soumis ) . iii . L' inactivation du premier bromodomaine de Brdt chez la souris provoque une stérilité chez les individus touchés et la production de spermatides de morphologie anormale à partir du stade 9 de la spermiogenèse . La mutation provoque également une augmentation de la quantité du variant H 1t dans les spermatides ( Shang et al. , 2007 ) . II . Brdt appartient à la famille des protéines BET a . Structure primaire La famille des protéines BET ( Bromodomain and Extra-Terminal ) comprend Brdt , Brd 2 , Brd 3 et Brd 4 chez les mammifères , la protéine Fsh identifiée chez la drosophile , et les protéines Bdf 1 et Bdf 2 chez la levure . Contrairement à Brdt qui est exprimé spécifiquement dans les testicules et les ovaires , Brd 2 , Brd 3 et Brd 4 sont exprimés de façon ubiquitaire ( Shang et al. , 2004 ) . Brdt est l' homologue le plus éloigné ( environ 47 % d' identité de séquence avec ses paralogues Brd 2 , Brd 3 et Brd 4 ) . Brd 2 et Brd 3 sont les plus proches ( environ 60 % d '' identité de séquence ) ( Paillisson et al. , 2007 ) . Les protéines BET présentent sept domaines conservés : deux bromodomaines ( BD1 et BD2 ) - séparés par une région dont la longueur varie de 120 résidus pour Brdt à 170 résidus pour Brd 4 - , un domaine ET ( extra-terminal ) , un motif A situé entre BD1 et BD2 , un motif B situé après BD2 , un domaine SEED riche en résidus sérine , aspartate et glutamate , enfin un domaine CTM à l' extrémité C terminale présent chez Brd 4 , Brdt et Fsh ( Florence et Faller , 2001 ; Paillisson et al. , 2007 ; Wu et Chiang , 2007 ) [ Figure 12 et alignements des séquences de ces domaines en annexe 3 ] . Les bromodomaines paralogues sont très conservés ( 71 à 88 % d' identité de séquence ) , alors que les bromodomaines d' une même protéine ont seulement environ 44 % d' identité . Le domaine ET est le plus conservé avec 80 à 89 % d' identité ( Paillisson et al. , 2007 ) . Nous allons voir que les domaines ET , SEED et CTM assurent des interactions avec d' autres protéines . b . Aperçu des fonctions des protéines de la famille BET Contrairement à Brdt , Brd 2 et Brd 4 sont des gènes essentiels . Leur mutation chez la souris conduit à une mortalité embryonnaire ( Houzelstein et al. , 2002 ; Shang et al. , 2007 ) . Brd 2 et Brd 4 sont principalement associées à l' euchromatine ( Denis et al. , 2000 ; Mattsson et al. , 2002 ) . Brdt , Brd 2 , Brd 3 et Brd 4 restent associées avec la chromatine lors de la compaction qui a lieu pendant la mitose ( Dey et al. , 2003 ; Dey et al. , 2000 ; Kanno et al. , 2004 ; Pivot-Pajot et al. , 2003 ) . Cela indique que ces protéines pourraient être impliquées dans un phénomène de mémoire cellulaire . Brd 2 , Brd 3 et Brd 4 sont impliquées dans la régulation de la transcription . Brd 2 ( anciennement RING3 ) s' associe avec le complexe activateur de la transcription E2F-1 et participe ainsi à l' activation des promoteurs de plusieurs gènes régulateurs du cycle cellulaire ( Dey et al. , 2000 ) . La protéine s' associe également à E2F-2 ( Denis et al. , 2006 ) , TBP dont elle assure l' insertion dans le complexe E2F ( Peng et al. , 2007 ) et avec la grande sous-unité de la RNA polymérase II ( Crowley et al. , 2002 ) . La région contenant de domaine SEED de Brd 2 est essentielle pour l' interaction avec E2F- 1 et E2F- 2 ( Denis et al. , 2000 ) . Brd 4 s' associe avec plusieurs complexes de régulation de la transcription , dont le complexe Mediator ( Wu et al. , 2003 ) et la forme activatrice du complexe P-TEFb ( Yang et al. , 2008 ) . Sa présence induit une augmentation de la transcription de certains gènes et stimule celle associée au promoteur HIV- 1 ( Yang et al. , 2005 ) . D' autre part , Brd 4 fait partie d' un complexe de répression de la transcription utilisé par les virus HPV ( Human PapillomaViruses ) ( Wu et al. , 2006 ) . Une étude a montré récemment que la reconnaissance de la chromatine hyper-acétylée sur H4 et H3 par Brd 2 et Brd 3 a lieu dans des régions occupées par des gènes transcrits et que les protéines ont la propriété d' activer la transcription par la RNA polymérase II ( LeRoy et al. , 2008 ) . Ces observations indiquent que les protéines Brd 2 , Brd 3 et Brd 4 sont de véritables co-facteurs transcriptionnels . Brd 2 et Brd 4 sont impliquées dans la ségrégation de génomes viraux . Brd 2 et Brd 4 s' associent avec la protéine LANA ( LAtent Nuclear Antigen ) du virus KSHV ( Kaposi's Sarcoma-associated HerpesVirus ) ( Ottinger et al. , 2006 ; Platt et al. , 1999 ; You et al. , 2006 ) . Brd 4 interagit également avec la protéine E2 du virus HPV ( Wu et al. , 2006 ) et permet ainsi l' attachement des virus aux chromosomes mitotiques et leur transmission aux cellules filles . Le domaine CTM a été identifié comme étant responsable de cette interaction pour Brd 4 . La structure cristallographique à 1 , 6 Å de la partie N termiale du virus HPV en complexe avec les 20 résidus de Brd 4 impliqués montre un domaine CTM replié en hélice ? ( Abbate et al. , 2006 ) . Le domaine ET de Brd 4 semble quant à lui servir de domaine d' interaction pour la protéine LANA de KSHV . Sa structure a été déposée récemment dans la Protéine Data Bank [ PDB 2 JNS ] et montre une structure globulaire faite de trois hélices ? et d' une boucle tout à fait compatible avec une telle fonction . Brd 2 et Brd 3 ont une activité de chaperon vis à vis des histones . Brd 2 et Brd 3 rendent possible la transcription dans une fibre contenant des nucléosomes acétylés et Brd 2 provoque l' assemblage de nucléosomes sur un brin d' ADN nu à partir d' une fibre de quelques nucléosomes et de nucléosomes désassemblés ( LeRoy et al. , 2008 ) . Bdf 1 prévient la propagation de l' hétérochromatine . La protéine Bdf 1 de levure , similaire à la protéine Brd 4 des mammifères , entre en compétition avec Sir ( Silent information regulator ) pour la fixation de la queue acétylée de l' histone H4 et empêche sa fixation aux zones frontières entre l' euchromatine et l' hétérochromatine ( Ladurner et al. , 2003 ) . Cette fonction dépendante de l' acétylation est corrélée avec le recrutement du complexe de remodelage de la chromatine Swr 1 qui permet l' insertion du variant H2A.Z de l' histone H2A dans ces régions ( Kobor et al. , 2004 ; Krogan et al. , 2003 ; Mizuguchi et al. , 2004 ) . Bdf 1 régule également l' expression de plusieurs gènes et interagit via son domaine ET avec la sous-unité TAF7 du facteur de transcription TFIID ( Matangkasombut et al. , 2000 ) . En conclusion , les protéines BET possèdent un grand nombre de fonctions liées à l' organisation de la chromatine qui passent par des interactions variées avec d' autres protéines . Les domaines ET , SEED et CTM sont impliqués dans ces interactions protéine-protéine . c . Spécificités vis à vis de l' acétylation des histones Les fonctions évoquées plus haut dépendent pour la plupart de l' acétylation de la chromatine . Nous allons résumer ici les informations disponibles concernant les bromodomaines très conservés de ces protéines . Il apparaît entre les bromdomaines , même des proches homologues Brd 2 , Brd 3 et Brd 4 des différences de spécificité . La diversité des techniques utilisées rend cependant la comparaison délicate . i . Brd 2 Kanno et ses collègues ( 2004 ) ont montré in vivo par FRET que Brd 2 interagit préférentiellement avec la queue N terminale de l' histone H4 tétra-acétylée . Cette interaction est abolie par la mutation des lysines K12 et K5 de la queue H4 en glycine . Elle est réduite si ce sont les lysines K8 et K16 qui sont mutées . Dans la même étude , ils montrent par une expérience de co-purification que Brd 2 présente pour le peptide H 4 -K 12 ac une forte affinité . La reconnaissance de la mono-acétylation H 4 -K 12 ac est ensuite confirmée in vivo par la disparition du FRET entre Brd 2 et un nucléosome portant la mutation K12R sur l' histone H4 mais pas entre Brd 2 et un nucléosome portant la mutation H4-K5R. Ils montrent ensuite que Brd 2 ne présente pas d' affinité pour la queue H3 acétylée . De plus l' inactivation de l' un ou l' autre des bromodomaines entraîne une réduction significative ( 50 % environ ) de l' interaction pour H4 , quel que soit le bromodomaine touché ( Kanno et al. , 2004 ) . La structure cristallographique du premier bromodomaine de Brd 2 met en évidence un dimère dans l' unité asymétrique qui semble exister en solution . La mutation des résidus responsables de la formation du dimère résulte à une perte de l' affinité de Brd 2 -BD1 pour le peptide H 4 -K 12 ac ( Nakamura et al. , 2007 ) . La structure du second bromodomaine de la protéine ( Brd 2 -BD2 ) a également été résolue par RMN ( Huang et al. , 2007 ) . La perturbation chimique induite par la titration des peptides H 4 -K 8 ac , H 4 -K 12 ac , H 2B -K 5 ac montre que H 4 -K 12 ac est préférentiellement reconnu par Brd 2 -BD2 parmi ces peptides ( Kd ~ 2 , 9 mM ) . ii . Brd 3 Une étude a montré récemment que l' activation de la transcription induite par la reconnaissance de la chromatine hyper-acétylée sur H4 et H3 par Brd 2 et Brd 3 était inhibée par la présence des peptides H 4 -K 5 ac et H 4 -K 12 ac . Témoignant d' une divergence de fonction entre les proches homologues Brd 2 et Brd 3 , l' inactivation de Brd 3 par l' un ou l' autre des peptides est équivalente alors que le peptide H 4 -K 12 ac a un effet plus important que H 4 -K 5 ac sur l' activité de Brd 2 ( LeRoy et al. , 2008 ) . iii . Brd 4 Dey et ses collègues ( 2003 ) ont montré par co-purification que Brd 4 interagit avec les peptides H4 tétra-acétylés , avec le peptide di-acétylé H 4 -K 5 K 12 ac et dans une moindre mesure avec le peptide H 4 -K 8 K 12 ac mais pas avec les peptides H4 mono-acétylés sur les lysines K8 , K12 ou K16 . Par ailleurs , contrairement à Brd 2 et Brdt , Brd 4 montre une affinité pour les peptides H3 di-acétylés sur les lysines K9 et K14 et mono-acétylés sur la lysine K14 ( affinité légèrement plus faible ) ( Dey et al. , 2003 ) . Récemment la structure de Brd 4 -BD2 a été obtenue par RMN . La perturbation chimique induite par la titration des peptides H 4 -K 5 ac , H 4 -K 12 ac , H 4 -K 5 K 12 ac et H 3 -K 9 K 14 ac dans des solutions de BD1 ou BD2 indique que les bromodomaines lient les peptides H3 et H4 di-acétylés avec des affinités similaires . Les affinités de BD1 et BD2 vis à vis des peptides H 4 -K 5 ac , H 4 -K 12 ac ont été déterminées et sont respectivement égales à 0 , 8 et 0 , 6 mM pour BD1 et 1 , 0 et 1 , 3 mM pour BD2 ( Liu et al. , 2008 ) . iv . Bdf 1 Bdf 1 reconnaît un peptide H4 tétra-acétylé avec une forte affinité ( 8 , 4 µM ) et un peptide H3 tétra-acétylé ou di-acétylé sur les lysines K14 et K18 avec une affinité legèrement plus faible ( 14 µM pour H 3 -K 14 K 18 ac ) ( Ladurner et al. , 2003 ) . Bdf 1 se lie spécifiquement à la chromatine hyperacétylée sur H3 et H4 mais non-acétylée sur la lysine K16 de H4 des gènes transcrits ( Kurdistani et al. , 2004 ) . Contrairement à lui , le très proche homologue Bdf 2 lie l' histone H4 sans discrimination vis à vis de son état d' acétylation ( Matangkasombut and Buratowski , 2003 ) . E . Le bromodomaine : structure et fonction Le bromodomaine est un module de 110 acides-aminés environ . Son repliement est très conservé . Il est constitué par l' empilement de 4 hélices en un tonneau qui présente à une de ses extrémités les parties N et C terminales de la chaîne peptidique et à l' autre extrémité les boucles ZA et BC [ Figure 13 ] ( Jeanmougin et al. , 1997 ) . Ce repliement fait du bromodomaine un module indépendant et permet l' existence de séries de bromodomaines placés les uns à côté des autres . Les bromodomaines sont des modules de liaison des lysines acétylées . Ils sont capables de discriminer un site d' acélylation grâce aux résidus adjacents à l' acétyl-lysine . L' adaptation de chaque bromodomaine à son ligand se fait grâce aux boucles ZA et BC de séquences variables qui portent le site de fixation du peptide acétylé ( Mujtaba et al. , 2007 ; Zeng and Zhou , 2002 ) . Ils sont présents dans de nombreuses protéines associées à la chromatine , telles que des histones acétyl-transférases ou des complexes de remodelage de la chromatine ( Yang , 2004 ) . Les affinités mesurées jusqu'ici entre les bromodomaines et les peptides reconnus sont relativement faibles comparées à une affinité de type antigénique ou même d' une reconnaissance enzyme-substrat . Elle varie de quelques milli-molaires à quelques micro-molaires . L' ordre du micro-molaire semble définir une interaction spécifique entre un bromodomaine et un peptide acétylé [ Annexe 4A ] . Les bromodomaines peuvent être seuls , associés par deux ou associés à d' autres domaines de reconnaissance d' une MTP ( à un PHD finger par exemple ) . Par exemple , la protéine Pb 1 porte six bromodomaines adjacents dont les spécificités vis à vis des sites d' acétylation de l' histone H3 sont toutes différentes . Plus fréquemment , on trouve un tandem de bromodomaines . C' est le cas chez les protéines TAFII250 et yRsc 4 . Les structures cristallographiques de ces tandems révèlent que chaque bromodomaine interagit largement avec l' autre pour former un module ou les deux sites de fixation se trouvent l' un à côté de l' autre ( Jacobson et al. , 2000 ; VanDemark et al. , 2007 ) . D' autres modes ne sont pas exclus . Dans le cas des protéines BET par exemple , les bromodomaines sont séparés par une longue région , prédite pour être largement non structurée . Il est donc probable que , dans ce cas , les deux bromodomaines soient indépendants l' un de l' autre . Une unique étude a permis de décrire pour la première fois le repliement du domaine , de mettre en évidence sa capacité d' interagir spécifiquement avec une lysine acétylée ( Dhalluin et al. , 1999 ) . Les auteurs ont déterminé par RMN la structure atomique du bromodomaine de P / CAF et ont mesuré ses affinités pour différents peptides acétylés . Ils ont ensuite montré l' importance des résidus V752 , Y760 , Y802 et Y809 pour l' interaction avec le peptide . Depuis , de nombreuses autres structures de bromodomaines ont été déterminées par RMN ou par cristallographie aux rayons X. Les structures d' environ 25 bromodomaines différents sont actuellement disponibles [ Annexe 4B ] . L' analyse de celles des bromodomaines de Brd 2 , Brd 3 , Brd 4 et Brdt-BD1 montre que leurs structures sont très similaires puisqu' elles présentent des r . m . s . d ( déviations moyennes ) sur les C ? allant de 0 , 3 à 0 , 6 Å environ . Il existe relativement peu de structures qui permettent de visualiser l' interaction entre le bromodomaine et un peptide acétylé . Seules les structures en complexe des bromodomaines de la protéine de levure GCN5 ( Owen et al. , 2000 ) , celles des protéines humaines P / CAF ( Mujtaba et al. , 2002 ; Zeng et al. , 2008 ) et CBP ( Mujtaba et al. , 2004 ; Zeng et al. , 2008 ) et du double bromodomaine de la protéine de levure Rsc 4 ( VanDemark et al. , 2007 ) ont été publiées . La structure du complexe yGCN 5 / H 4 acK 16 montre pour la première fois les détails structuraux de l' interaction entre la lysine acétylée et la cavité hydrophobe . Elle met notamment en évidence l' existence d' une liaison hydrogène entre le groupe acétyle de la lysine reconnue et une asparagine ( N407 ) conservée chez la grande majorité des bromodomaines . Ces quatre complexes montrent qu' il existe , outre la reconnaissance de la lysine acétylée , des interactions entre les boucles ZA et BC de séquences très variables et les résidus adjacents à la lysine acétylée . Ces interactions permettent de toute évidence aux bromodomaines d' acquérir une spécificité vis à vis des différents sites d' acétylation . Le site de liaison de la lysine acétylée est formé par une cavité qui existe avant la fixation du ligand . Cela fait de lui une cible potentielle pour de petites molécules bloquant l' interaction entre le bromodomaine et son ligand . Ainsi des inhibiteurs sélectifs de l' interaction entre le bromodomaine de P / CAF et le peptide HIV- 1 Tat-K 50 ac ( Zeng et al. , 2005 ) et de l' interaction entre CBP et le peptide P 53 -K 382 ac ( Sachchidanand et al. , 2006 ) ont été développés . Ces molécules se fixent à l' entrée de la cavité , principalement en contact avec des résidus variables de la boucles ZA . Cela leur permet d' être spécifiques de l' un ou l' autre des bromodomaines . F . Déroulement du travail de thèse Le projet a débuté suite à la cristallisation de Brdt-BD2 en complexe avec le peptide H 4 -K 12 ac et au constat que ce peptide ne montrait pas d' affinité mesurable par ITC pour Brdt-BD2 . Nous avons ensuite entrepris d' identifier la spécificité de chacun des bromodomaines de Brdt pour les queues N terminales acétylées des histones H4 et H3 . Nous avons également déterminé l' impact de la mutation de K61Q de BD1 sur la fixation de son ligand . Ces travaux se sont accompagnés de la résolution par cristallographie aux rayons X des structures de Brdt-BD1 et Brdt-BD2 en complexe avec différents peptides acétylés . Partie II : Matériels et Méthodes Matériels et Méthodes A . Production des protéines I. Clonage Les protéines ? CBrdt , BD1 , BD2 et BD1-K62Q [ Tableau 3 ] dérivent de l' ADNc de la protéine Brdt de souris ( référence GenBank : AF019085 ) fourni par nos collaborateurs . Le clonage des fragments codants pour les protéines ? CBrdt et BD2 a été réalisé par M. Soler dans un vecteur d' expression conçu dans le cadre d' un projet de cristallisation à haut débit . Ce vecteur ( pHAR 1201 ) permet d' obtenir les protéines en fusion avec une queue de six histidines , clivable grâce à la présence d' un site de reconnaissance pour la protéase TEV ( Tobaco Each Virus ) . Les protéines BD1 et BD1-K62Q ont été obtenues par l' amplification des résidus indiqués dans le tableau 3 . Les oligonucléotides utilisés pour les réactions de PCR ( Polymerisation Chain Reaction ) sont indiqués dans le tableau 4 . Chaque insert a été digéré par l' enzyme de restriction BsaI , NcoI ou FatI en 5 ' et Acc 65I en 3 ' et inséré dans un vecteur pETM 11 préalablement linéarisé par la digestion des enzymes NcoI et Acc 65I . Les protéines de fusion obtenues possèdent une étiquette six histidines clivable par la protéase TEV . Tableau 3 : Constructions de Brdt utilisées pendant la thèse Tableau 4 : Oligonucléotides utilisés pour les clonages de BD1 II . Expression La protéine ? CBrdt a été produite par des cellules bactériennes BL21-AI ( Arabinose Induicible ) dont l' induction a été réalisée par l' ajout de 2 % d' arabinose dans le milieu de culture et mise en culture pendant une nuit à 18 °C. Les protéines BD1 , BD2 et BD1-K62Q ont été produites par des bactéries BL21-DE3 après induction par 0 , 4 mM d' IPTG et mise en culture à 18 - 25 °C pendant une nuit . III . Purification Les protéines ont été purifiées selon le même protocole , comprenant 6 étapes : 1 . Lyse des cellules par sonication ; ultracentrifugation ( 30 minutes à 20 000 g ) ; récupération du surnageant 2 . Première purification d' affinité sur des colonnes de sépharose couplée à du nickel ou du cobalt & 226;& 128;& 147; Lavage abondant & 226;& 128;& 147; Elution par un gradient d' imidazole 3 . Elimination de l' imidazole et clivage de la queue six histidines par ajout de la protéase TEV dans l' éluat et mise en dialyse pendant une nuit 4 . Seconde purification d' affinité pour éliminer les protéines non clivées et la protéase ( qui porte une queue six histidines ) & 226;& 128;& 147; récupération directe de l' éluat ou suite à un léger gradient d' imidazole 5 . Chromatographie d' exclusion sur gel par chromatographie liquide de haute pression & 226;& 128;& 147; récupération du pic correspondant à la protéine pure Vue la grande quantité de protéine necessaire pour les expériences de microcalorimètrie et de cristallographie ( plusieurs dizaines de mg ) , nous avons utilisé des moyens permettant une automatisation importante . Les purifications d' affinité ont été réalisées sur des colonnes à forte capacité de fixation HiTrap ( Amersham ) chélatées avec du nickel ou du cobalt en utilisant le système de chromatographie à basse pression AKTAprime . Celui -ci permet de réaliser l' injection du lysat sur la colonne , les lavages , la réalisation du gradient d' imidazole et la collection de l' éluat par fractions de façon automatique tout en suivant l' évolution de la densité optique à 280 nm . La chomatographie d' exclusion de taille a été réalisée sur des colonnes Superdex 75 ( pour BD1 et BD2 ) ou Superdex 200 ( pour ? CBrdt ) en utilisant un système à haute pression Aktapurifier permettant de réaliser une vingtaine de cycles d' injection / élution sur la colonne et de collecter les fractions correspondant au pic de protéine de façon automatique . Pour limiter les dégagements de chaleur dus à la dilution de la solution tampon lors des expériences d' ITC , les solutions tampon ne contiennent pas de Tris et le DTT est eliminé lors de l' étape de chromatographie d' exclusion . La composition des solutions tampons est indiquée ci-dessous [ Tableau 5 ] . Tableau 5 : Composition des solutions tampon utilisées lors de la purification des protéines . IV . Concentration et conservation Les protéines pures ont été concentrées par centrifugation sur membrane de cellulose jusqu'à une concentration voisine de 40 mg / mL puis congelées par immersion dans un bain d' azote liquide . L' intégrité des protéines après congélation a été vérifiée par diffusion dynamique de lumière et par le maintien de la capacité de BD2 à cristalliser . B . Diffusion statique de lumière Pour étudier l' état oligomèrique des protéines nous avons utilisé une technique couplant la diffusion statique de lumière à angles multiples ( MALLS ) et la chromatographie d' exclusion à haute pression . En premier lieu , la chromatographie d' exclusion permet de séparer les molécules selon leur volume hydrodynamique . Ensuite la diffusion statique de lumière qui utilise le fait que l' intensité de la lumière diffusée par une solution est directement proportionnelle à la masse moléculaire moyenne de l' ensemble de ses composants permet de déterminer la masse moléculaire absolue des molécules de chaque pic ( Wyatt , 1993 ) . Nous avons pour cela utilisé une colonne de chromatographie d' exclusion de taille couplée à un réfractomètre . Les expériences de MALLS sur BD1 et BD2 ont été réalisées avec les constructions BD 1 SI- 2 et BD 2 A 12 dans un tampon constitué de 20 mM Tris pH 8 , 0 , 250 mM NaCl , 1 mM DTT . Les expériences sur ? CBrdt ont été réalisées avec la construction SP6 à 8 mg / mL dans un tampon contenant 100 mM NaCl et 10 mM Hepes pH 8 , 0 . C . Réticulation chimique Le principe de la réticulation chimique est de créer un lien covalent entre deux groupements fonctionnels d' une molécule biologique par l' intermédiaire d' un agent réticulant . L' agent réticulant est caractérisé par ses groupements fonctionnels ( qui vont réaliser le lien covalent ) et par la longueur de la chaîne carbonée qui sépare les groupements fonctionnels . Nous avons utilisé le sulfo-EGS [ Figure 14 ] dont les deux groupements réactifs , espacés de 16 Å , réagissent sur la fonction amine terminale et sur les amines ? des lysines pour former une liaison amide . Des ponts intermoléculaires sont formés entre molécules voisines en interaction . Les expériences ont été réalisées avec les protéines BD1 ( SII- 1 ) , BD2 ( A12 ) et ? CBrdt ( SP6 ) dans leurs tampons de gel filtration [ Tableau 5 ] . Une solution stock d' EGS à 50 mM a été réalisée dans du DMSO et diluée dans de l' eau pour obtenir un gradient de concentration . 1 µL de chaque dilution a été ajouté à 9 µL de solution de protéine . La réaction est arrêtée après 20 minutes par ajout de 1 µL de Tris 1M. Les échantillons ont été analysés par migration électrophorétique sur gel SDS-PAGE . D . Microcalorimétrie Pour comparer les interactions entre un bromodomaine et différents peptides acétylés nous avions principalement le choix entre les techniques suivantes : résonance magnétique nucléaire , résonance plasmonique de surface , microcalorimétrie ( calorimétrie à titration isotherme ) , dépolarisation de fluorescence . Nous avons choisi la calorimétrie à titration isotherme car elle permet de quantifier précisément des interactions dont les constantes d' affinités varient de 102 à 109 M et que nous disposions d' un appareil sur place . La technique nécessite cependant de grandes quantités de protéine et de ligand . Elle est aussi relativement longue ( environ quatre heures par expérience ) . Si on considère le nombre d' expériences que nous avons finalement réalisées , une étape préliminaire de criblage aurait pu être utile pour éliminer les peptides n' ayant pas ou peu d' affinité . I. La calorimétrie à titration isotherme La calorimétrie à titration isotherme est une méthode très rigoureuse pour caractériser les interactions protéine-ligand puisque la protéine ne subit aucune modification et que les paramètres de la liaison : n ( stoechiométrie ) , ? H ( enthalpie de liaison ) et Ka ( constante d' association ) sont déduits directement de la chaleur de réaction enregistrée ( Jelesarov and Bosshard , 1999 ; Pierce et al. , 1999 ) . Au cours de l' expérience , une seringue contenant le ligand ( le peptide ) est titré dans une cellule contenant la solution de macromolécule ( la protéine ) et cela à température constante . Lorsque le peptide est injecté dans la cellule , les deux matériaux interagissent et de la chaleur est émise ou absorbée , en proportion directe avec la quantité de liaison . Cela permet de déduire les paramètres expérimentaux de la liaison à partir d' une expérience unique . Il faut tout de même noter que dans ce cas l' hypothèse est faite que ces paramètres expérimentaux observés ne sont pas biaisés par des réactions associées telles que des échanges de protons , des changements de conformation , des réactions de dimérisation ou de dénaturation . Dans le calorimètre , des cellules jumelles sont placées dans un environnement adiabatique . Un appareil thermoélectrique mesure la différence de température entre les cellules et un deuxième appareil mesure la différence de température entre les cellules et l' enceinte [ Figure 15 ] . Les réactions chimiques donnent lieu à un dégagement ( ou à une consommation ) de chaleur . La différence de température entre cette la cellule expérimentale et la cellule de référence est maintenue constante . La quantité de courant électrique nécessaire pour maintenir cette différence constante au cours du temps est une mesure de la quantité de chaleur échangée lors de la réaction . La présentation classique des données d' une expérience ( voir les figures d' ITC en annexe ) donne dans un panneau supérieur les variations de ce courant électrique et dans un panneau inférieur son intégration au cours du temps , normalisée par la quantité de peptide injecté , en fonction du rapport molaire peptide / protéine . II . Mode opératoire Les expériences ont été réalisées à 25 °C avec un micro-calorimètre VP-ITC ( MicroCal ) . Nous avons utilisé les paramètres de liaison observés pour comparer les affinités de ? C-Brdt , BD1 , BD2 et BD1-K61Q vis-à-vis de différents peptides . Les solutions de peptides ont été injectées dans la cellule expérimentale contenant 1 , 7 mL de solution de protéine sous agitation . Une expérience classique consiste en une série de 40 à 50 injections de 5 µL chacune et espacées de périodes de 300 s pour laisser le système atteindre son équilibre . Pour minimiser les échanges de chaleur dus aux échanges de protons dans la solution tampon nous avons utilisé un composé dont l' enthalpie d' ionisation est faible . En effet de très faibles variations de pH entre la solution injectée et la solution présente dans la cellule peuvent provoquer de forts dégagements de chaleur si le tampon utilisé possède une enthalpie d' ionisation élevée . C' est par exemple le cas du Tris ( DHionisation = 11 , 4 kcal / mol ) . Nous n' avons pas utilisé le phosphate qui présente pourtant une des enthalpies les plus faibles ( DHionisation = 0 , 9 kcal / mol ) car nous pensions qu' il pouvait entrer en compétition avec le groupe acétyle du peptide pour la fixation au bromodomaine . Nous avons utilisé l' Hepes ( DHionisation = 5 , 7 kcal / mol ) qui reste un tampon acceptable pour l' ITC . Pour réduire la différence de pH entre la solution de peptide injectée et celle de protéine : ( i ) les peptides ont été traités avec du carbonate d' hydrogène pour éliminer l' acide trifluorique utilisé lors de leurs purification ; ( ii ) Les peptides lyophilisés ont été dissouts dans la solution tampon utilisée pour purifier la protéine . Enfin , pour mesurer la chaleur dégagée par la réaction de dilution du peptide , nous avons réalisé une expérience de titration du peptide dans la solution tampon seule . Pour chaque expérience , le signal de cette expérience de dilution du peptide a été soustrait aux données . Les données ont été analysées avec le programme ORIGIN ( MicroCal ) . L' affinement des paramètres de la liaison : Ka ( constante d' affinité , Ka = 1 / Kd ) , DH ( enthalpie de liaison ) , et n ( stoechiométrie ) a été réalisé par cycles itératifs de minimisation d' un résiduel par la méthode des moindres carrés . La cohérence du modèle par rapport aux données est mesurée par la valeur de ? 2 . Nous avons utilisé un modèle considérant un seul site de fixation par molécule . Les expériences ont été réalisées deux fois au minimum . Dans le cas de l' affinement des données de ? C-Brdt , nous devions choisir entre utiliser un modèle à un site , à deux sites indépendants ou à deux sites coopératifs car la protéine porte deux sites de fixation . Le modèle à un site de fixation est le seul pour lequel les erreurs sur les paramètres de la liaison sont acceptables . C' est donc celui que nous avons utilisé . Les peptides ont été synthétisés par le laboratoire Peptide Speciality Laboratories ( Heidelberg ) . Les solutions de peptides utilisées ont été obtenues en dissolvant les peptides lyophilisés dans la solution tampon utilisée pour la purification de la protéine . La concentration ( de 1 , 9 mM et 5 , 6 mM ) a été déterminée par analyse d' acide-aminé ( réalisées par J.P . Andrieux à l' IBS ) . Les échantillons de protéines ont été obtenus en diluant la solution stock de protéine dans son tampon de purification . La concentration ( entre 0.05 et 0.16 mM ) a été déterminée par mesure de l' absorbance à 280 nm en utilisant un coefficient d' extinction déterminé expérimentalement par analyse d' acide-aminé ( réalisées par J.P. Andrieux à l' IBS ) . E . Cristallographie aux rayons X I. Production des cristaux a . La cristallogénèse La cristallisation est une transition de phase au cours de laquelle la molécule passe d' un état de soluté à un état de phase solide , le cristal . Le comportement d' une molécule en fonction des variations de son environnement ( pH , force ionique , température , pression ... ) peut être décrit sous forme d' un diagramme de phases dans lequel la courbe de solubilité définit la limite entre la phase soluble et la phase solide ( le cristal ou le précipité ) . Au niveau de cette courbe , les deux états sont en équilibre thermodynamique , au-delà de cette courbe la solution est dite sur-saturée . La sursaturation constitue la force motrice qui conduit à l' initiation de la cristallisation , la nucléation . La croissance du cristal s' opère ensuite à partir de chaque noyau tant que l' état de sursaturation est maintenu . Aucun moyen théorique ne permet de prévoir les conditions qui mèneront la protéine à cristalliser . Le criblage d' un grand nombre de conditions différentes est souvent utilisé . Ce criblage robotisé permet l' obtention de cristaux de petite taille ( de l' ordre de 0 , 01 mm ) , de micro-cristaux ou de simples transitions de phases . Les cristaux éventuellement obtenus lors de cette étape , même très petits , peuvent être utilisés directement sur des lignes au rayonnement adapté ( microfocus ) mais sont plus sensibles aux dommages dus aux radiations . Ainsi , il est souvent nécessaire de reproduire ou d' améliorer la taille des cristaux obtenu lors du criblage . b . Criblage des conditions de cristallisation Le laboratoire de cristallisation à haut débit de l' EMBL réalise en routine le criblage de 576 conditions différentes pour chaque échantillon . Un robot de cristallisation ( Cartesian PixSys 4200 ) mélange 100 nL de protéine et de 100 nL de solution de cristallisation . Les gouttes assises sont ensuite mises à équilibrer par diffusion de vapeur à 20 °C ou 4 °C. Nous avons testé pour chaque échantillon les conditions de cristallisation proposées commercialement par Hampton Research dans les Crystal screen I Les boîtes ont ensuite été stockées à 20 °C dans un robot qui prend une photo des gouttes après 24h , 72h , 1 semaine , 2 semaines puis chaque mois . c . Affinement des conditions de cristallisation L' affinement a été réalisé par la technique de cristallisation dite de la goutte suspendue dans laquelle le mélange de 1 à 2 ? l de protéine est mélangé à 1 à 2 ? de la solution de cristallisation et mis à équilibrer au dessus d' un réservoir contenant 0 , 8 à 1 mL de la solution de cristallisation . Au cours de l' équilibration par diffusion de vapeur les composés volatiles de la goutte et du réservoir se répartissent de façon que les tensions de vapeur à la surface des deux compartiments soient identiques . Ce processus concentre l' agent cristallisant et la protéine dans la goutte et la conduit éventuellement à cristalliser . Pour améliorer les cristaux de nombreuses techniques peuvent être utilisées . Pour réduire la fréquence de nucléation , nous avons fait varier le rapport entre la protéine et la solution de cristallisation dans la goutte ( variation de la cinétique au sein du diagramme de phase ) . Nous avons également eu recours à l' ensemencement et au micro-ensemencement d' une goutte a l' état sur-saturé par des débris de cristaux . d . Protection du cristal Pour éviter les dommages de la radiation dus à la formation de radicaux libres lors de l' exposition au rayons X , les cristaux sont congelés dans l' azote liquide . Pour éviter que l' eau contenue dans le cristal ne forme de glace , les cristaux sont passés dans un bain de solution de cryoprotection . Nous avons utilisé de 15 à 30 % de PEG400 ou de glycérol dans la solution de cristallisation . II . Quelques notions de cristallographie a . Le cristal Le cristal est un agencement périodique de molécules . La plus petite unité à partir de laquelle on peut reconstituer le cristal par des opérations de translation est la maille cristalline , elle peut appartenir à un système triclinique , monoclinique , orthorhombique , tétragonal , hexagonal ou cubique selon sa géométrie . L' unité asymétrique est le plus petit élément à partir duquel duquel on peut reconstituer le cristal par un certain nombre d' opérations de symétrie ( rotation et translation ) définies par le groupe d' espace du cristal . Il existe 65 groupes d' espaces différents pour un cristal de protéine . L' unité asymétrique peut contenir une ou plusieurs molécules ( ou complexes ) , qui seront alors liées par une relation de symétrie non cristallographique . Le cristal peut être représenté comme le produit de convolution d' un motif ( la macromolécule ) par un réseau ( caractérisé par la maille et le groupe d' espace du cristal ) , appelé réseau réel d' axes ( a , b , c ) . Le motif est répété à chaque noeud du réseau suivant les symétries du groupe d' espace . La cohésion du cristal est assuré par des liaisons de Van der Waals , des ponts salins et des liaisons hydrogène . L' empilement des éléments constitutifs du cristal n' est jamais parfait , on parle de la mosaïcité d' un cristal pour traduire ces défauts . Les espaces ménagés entre les macromolécules sont comblés par des molécules de solvant ( eau , ions , tampon ... ) , qui représentent en général 40 à 70 % du volume cristallin , ce qui confère aux cristaux de protéine leur grande fragilité . b . La diffraction Les rayons X sont des ondes planes monochromatiques de courte longueur d' onde ( ? = 100 - 0 , 1 Å ) . La diffraction est le résultat de l' interférence entre les rayons X diffusés par l' arrangement périodique des macromolécules qui constituent le cristal . La répétition des motifs dans le cristal permet l' amplification du signal . Les rayons X interagissent avec les atomes du cristal et sont diffusés mais seules les ondes qui diffusent en phase ont entre elles des interférences positives et donneront un signal , c' est la condition de diffraction . Seuls les éléments qui appartiennent à la famille de plans parallèles , espacés de d = ? / 2 sin ? ( ? : angle d' incidence du faisceau de rayon X ) ont des interférences positives . Cette condition de diffraction pour un cristal est connue sous le nom de Loi de Bragg [ Figure 16 ] et s' écrit alors N. ? = 2 . d . sin ? ( N : nombre entier , d : distance entre les plans qui diffractent , ? : angle d' incidence du faisceau de rayon X ) . La famille de plans qui diffracte est appelée famille de plans réticulaires , elle est caractérisée par ses indices de Miller ( h , k , l ) signifiant le nombre de fois que les plans divisent la maille selon ses 3 directions ( a , b , c ) . La Loi de Bragg montre que pour un angle d' incidence ? donné , seul un nombre limité de familles de plans diffracte . Pour amener toutes les familles de plans à diffracter , il faut donc faire varier l' angle d' incidence . En pratique le cristal est monté sur une tête goniométrique qui permet sa rotation dans le faisceau . En général , une image est enregistrée tout les 0 , 5 ° à 1 ° jusqu'à ce qu' un jeu de données complet soit enregistré , au bout de 180 ° pour les cristaux de la plus basse symétrie ( P1 ) . La loi de Bragg montre également que la résolution ( d ) est théoriquement limitée par la seule longueur d' onde . C' est pourquoi le rayonnement doit avoir une longueur d' onde du même ordre de grandeur que les distances interatomiques , c' est à dire de l' ordre de 1 , 5 Å pour pouvoir résoudre des atomes . La densité électronique appartenant aux plans d' indices h , k , l du réseau réel produit une onde diffractée d' amplitude ( \|F\| ) et de phase ( ? ) . Cette onde est entièrement définie par son facteur de structure d' expression simplifiée F = \|F\|.ei ? ( F : vecteur F ) . On peut passer de la densité au facteur de structure et vice-versa par une opération mathématique , la transformation de Fourier . c . L' image Les clichés de diffraction sont enregistrés sur un écran CCD ( Coupled Device ) en quelques secondes . L' intensité de la réflexion est directement proportionnelle au carré de l' amplitude de l' onde ( I ~ \|F\| 2 ) . Les réflexions ( ou taches ) de coordonnées ( h , k , l ) forment un réseau appelé réseau réciproque [ Figure 17 ] qui peut être considéré comme la représentation de la transformée de Fourier du volume du cristal qui diffracte . La loi de Bragg et l' expression de la position de la réflexion sur l' image en fonction de l' angle ? permettent d' établir une relation simple entre la position d' un point dans le réseau réciproque et la distance entre les plans qui diffractent : d = ? / 2 sin ( Arctan ( x / D ) / 2 ) avec D : distance cristal-détecteur et X : distance de la tache au centre de l' image . On voit que les dimensions du réseau réciproque sont inversement proportionnelles à celles du réseau réel , ce qui explique notamment que l' information de haute résolution se trouve à la périphérie de l' image . d . Le problème des phases Le problème majeur de la cristallographie des macromolécules tient dans la perte d' information des phases des ondes diffractées . Seules les intensités des faisceaux diffractés sont enregistrées et l' information de déphasage des ondes les unes par rapport aux autres est perdue . Les détecteurs n' ont pas la capacité technique d' enregistrer cette information temporelle pourtant essentielle pour définir le facteur de structure qui permet de calculer la densité atomique . Le problème des phases peut être résolu de manière expérimentale par l' utilisation de la diffusion anomale et la résolution d' une sous-structure ou par la technique du remplacement moléculaire . Les méthodes faisant appel à la diffusion anomale supposent que la protéine contient des atomes de fort poids moléculaire ( S , Se , métaux lourds ) qui auront été introduits par trempage des cristaux ou au moment de l' expression de la protéine . Ces méthodes ( MIR , MAD , SAD , SIRAS ... ) sont plus compliquées à mettre en oeuvre puisque la position des atomes lourds doit être connue avant de pouvoir déterminer celle du reste des atomes de la protéine . La technique du remplacement moléculaire ne nécessite qu' un seul jeu de données et s' appuie sur le modèle d' une structure proche pour résoudre le problème des phases . III . Collecte et traitement des données de diffraction a . Collecte des données Nous avons utilisé le rayonnement synchrotron de l' ESRF avec des longueurs d' onde voisines de 1 Å. La ligne microfocus ID 23 -eh 2 a notamment permis d' irradier des volumes différents d' un même cristal affin de reconstituer un jeu de données complet et de qualité satisfaisante . Le chargement automatique des cristaux ( sample-changer ) a permis de tester la diffraction de plusieurs cristaux avant d' effectuer la collecte . b . Intégration et mise à l' échelle On appelle intégration la démarche allant du jeu d' images de diffraction jusqu'au fichier contenant les réflexions indexées par les entiers h , k , l et mesurées par les amplitudes et leurs écarts-types associés . Ce traitement est effectué de manière automatisé et comporte plusieurs étapes détaillées ci-dessous . Nous avons utilisé les programmes MOSFLM ( Leslie , 2006 ) et SCALLA de la suite CCP4 ( Collaborative Computational Project , 1994 ) ou la suite XDS / XSCALE ( Kabsch , 1993 ) suivant les cas . i . Détermination de la maille et du groupe d' espace Cette première étape de l' intégration est effectuée avec un algorithme d' auto-indexation . Des pics correspondant aux taches de diffraction sont mesurés sur une ou plusieurs images . Une liste de vecteurs entre pics est ensuite écrite . Les pics correspondent à des noeuds du réseau réciproque . L' auto-indexation va donc déterminer trois vecteurs non-coplanaires et le plus petit module permettant de rendre compte de la liste de pics . Le réseau réel est ensuite estimé , celui -ci impose un choix de groupes d' espace limité . Cependant des ambiguïtés peuvent demeurer quant aux axes hélicoïdaux et à leur sens . Ces ambiguïtés ne peuvent être vraiment résolues que pendant l' étape de résolution de la structure . ii . Indexation , intégration et correction des intensités Ces étapes sont réalisées avec les programmes MOSFLM ou XDS . Les données sont indexées image par image en affinant un certain nombre de paramètres comme la distance cristal-détecteur , la position du centre du détecteur , l' orientation du cristal , les paramètres de maille etc. Les profils de diffraction prédits sont ajustés aux taches observées . Chaque tache est alors indexée en h , k et l . Dans le même temps , l' intensité de la tache de diffraction est mesurée en appliquant un masque autour de la tache . La couronne interne délimite la surface à intégrer et la couronne externe permet d' estimer le bruit de fond à retrancher de l' intensité intégrée . Chaque tache est donc corrigée du bruit de fond et l' ajustement des masques pour les taches doit être optimal afin de maximiser le rapport signal / bruit . Différentes corrections sont également appliquées comme la correction cinématique de Lorentz tenant compte du passage différentiel des noeuds du réseau réciproque en position de diffraction : un noeud proche de l' axe de rotation sera en position de diffraction plus longtemps qu' un noeud éloigné . iii . Mise à l' échelle et réduction du jeu de données L' ensemble des images intégrées sont mises à l' échelle afin de constituer un jeu de données complet . Chaque image diffère par la dose de rayons X reçue et par la baisse du pouvoir de diffraction du cristal . Le jeu de données mis à l' échelle est ensuite moyenné sur les réflexions équivalentes par symétrie ou collectées plusieurs fois . Cette étape est réalisée par le programme SCALA ou XSCALE . Les données moyennées sur les réflexions équivalentes par symétrie peuvent ensuite être réduites à l' unité asymétrique . Dans SCALA , la qualité du jeu de données peut être estimée par les valeurs des Rsym entre les réflexions équivalentes sur l' ensemble du jeu de données et par le rapport signal / bruit I / sI. où Ii ( h ) est la i-ème mesure et < I ( h ) > la moyenne pondérée de toutes les mesures Ii ( h ) des réflexions équivalentes . XSCALE utilise un autre critère , le c 2 , où Ii ( h ) est la i-ème mesure , < I ( h ) > la moyenne pondérée de toutes les mesures Ii ( h ) des réflexions équivalentes , E est l' erreur du modèle et N est un facteur corrigeant la corrélation entre I et < i > . Enfin , les amplitudes sont calculées à partir des intensités avec le programme TRUNCATE . Il faut tenir compte à cette étape des intensités des réflexions faibles qui peuvent avoir été estimées négatives lors de la correction du bruit de fond . c . Remplacement moléculaire Il faut pour pouvoir utiliser cette technique disposer d' une structure proche déjà résolue . On fixe en général la limite au-dessous de laquelle le remplacement moléculaire n' est plus possible à 25 - 30 % d' identité de séquences . La technique , initiée par Rossman et Blow en 1962 est de plus en plus communément utilisée avec l' accroissement des structures disponibles dans les banques de données . Son principe repose sur l' utilisation des phases de la structure connue et placée dans la même orientation que la structure à déterminer , en combinaison avec les amplitudes obtenues expérimentalement pour calculer une première carte de densité . Nous avons utilisé pour cela les programme AMORE ( Navaza , 1994 ) et MolRep de la suite CCP4 ( Collaborative Computational Project , 1994 ) . Les deux programmes procèdent de façon similaire . Pour superposer au mieux le modèle et la structure à déterminer , le modèle subit d' abord une rotation puis une translation . La fonction de rotation évalue , en fonction de l' orientation du modèle par rapport à celle de la structure à déterminer , l' accord entre les vecteurs interatomiques . Ces vecteurs sont obtenus par la fonction de Patterson de type « Self-Patterson » . Si plusieurs molécules existent dans l' unité asymétrique et qu' elles n' ont pas la même orientation ( symétries non cristallographiques ) , alors la fonction de rotation aura plusieurs solutions . le modèle est ensuite positionné dans la maille par une opération de translation . Une fonction de translation compare les vecteurs intermoléculaires de la structure connue et inconnue pour différentes positions du modèle . Ces vecteurs sont obtenus par la fonction de Patterson de type « Cross-Patterson » . La qualité des solutions est estimée par la valeur des coefficients C ( corrélation ) et R ( différence ) calculée à partir des amplitudes des facteurs de structure du modèle et de la structure à déterminer . L' examen de l' empilement cristallin du modèle permet également de vérifier que la solution est acceptable . IV . Affinement du modèle Une fois que la première carte de densité est obtenue à partir du modèle issu du remplacement moléculaire commence le processus d' affinement cristallographique . Il vise à optimiser le modèle moléculaire , c' est-à-dire à modifier par une procédure mathématique et des interventions manuelles , ses paramètres ( coordonnées des atomes , facteurs B , ajout de molécules d' ea , ... ) de façon à rendre compte le mieux possible des mesures expérimentales . Du fait du grand nombre de paramètres variables , l' affinement est limité par le rapport du nombre d' observations sur le nombre de paramètres et ne converge de manière satisfaisante que si le nombre d' observations est supérieur au nombre de paramètres . Les paramètres sont en général au nombre de 4 par atome ( x , y , z , B ) . En règle générale , ces 4 paramètres peuvent être affinés si les cristaux diffractent au moins jusqu'à 2 , 5 Å. Il faut donc , dans la plupart des cas , soit augmenter le nombre d' observations ( affinement restreint ) , soit diminuer le nombre de paramètres , en en fixant certains par exemple ( affinement contraint ) . Les méthodes utilisées ensuite pour réaliser la convergence peuvent être divisées en deux groupes : celles qui utilisent la dynamique moléculaire et les autres , regroupées sous le terme de techniques par minimisation . a . Affinement par minimisation Les techniques de minimisation utilisaient initialement la minimisation d' une fonction cible traduisant la différence entre le modèle et les données ( d' où leurs noms ) . Mais la technique statistique du maximum de vraisemblance , plus performante , remplace la minimisation du résiduel dans la plupart des programmes récents . La technique d' affinement restreint ajoute des restrictions en apportant une information externe de stéréochimie . Les angles et les longueurs de liaison sont connus pour les petites molécules de même que plusieurs autres critères portant sur les angles dièdres propres et impropres . Dans le modèle , ces valeurs ne doivent pas trop s' écarter des valeurs standards et ces écarts constituent des observations supplémentaires . La technique d' affinement contraint consiste à réduire le nombre des paramètres affinés en imposant des contraintes géométriques . C' est par exemple le cas de l' affinement en « corps rigide » qui affine la position de l' ensemble de la chaîne ( ou de la région ) définie comme corps rigide sans flexibilité interne . La technique de minimisation d' énergie minimise une pseudo-énergie potentielle qui est l' énergie potentielle de la molécule complétée par un terme de rayons X. Les termes d' énergie peuvent être considérés comme des restrictions qui s' ajoutent aux paramètres à affiner . b . Affinement par dynamique moléculaire Les méthodes utilisant la dynamique moléculaire , le recuit simulé ( simulated annealing ) ou les méthodes aléatoires de Monte Carlo peuvent explorer un espace de solutions plus vaste , elles ont un rayon de convergence plus grand . Au lieu de minimiser l' énergie potentielle comme c' est le cas pour l' affinement par minimisation d' énergie , on calcule en chaque atome la force dérivée de ce potentiel et on applique à chaque atome un déplacement qui résulte de cette force et d' une vitesse initiale ( attribuée aléatoirement aux atomes ) . Cette énergie cinétique permet au système de franchir des barrières énergétiques de l' ordre son énergie cinétique . Cela évite que l' affinement reste bloqué dans un minimum secondaire . La technique du recuit simulé part d' une température initiale élevée ( 2500 à 3500 K ) et refroidit lentement le système . Elle est capable de déplacer automatiquement des chaînes latérales de plus de 2 Å ou de retourner des liaisons peptidiques . Cela permet de réduire considérablement les interventions manuelles et le nombre d' étapes d' affinement . c . Stratégie employée Le modèle obtenu par le remplacement moléculaire a tout d' abord été affiné en considérerant chaque molécule de l' unité asymétrique comme un corps rigide avec le programme MolRep . Ensuite nous avons alterné les étapes de dynamique moléculaire , d' affinement par minimisation d' énergie et d' affinement des facteurs B avec le programme CNS ( Brünger et al. , 1998 ) . Des contraintes de symétrie non cristallographique ont été utilisées entre les deux molécules de protéines et les deux molécules de peptide de l' unité asymétrique . Pour l' affinement du résidu acétyl-lysine , les librairies de CNS décrivant les paramètres concernant les angles et les liaisons ont été complétées ( Annexe 1 ) . Le remplacement des chaînes latérales du modèle par celles de la structure réelle , l' ajout des molécules d' eau , la construction du peptide ont été réalisés manuellement , guidés par les cartes de densité , avec le programme COOT ( Emsley et Cowtan , 2004 ) . V. Validation du modèle moléculaire Le processus d' affinement est suivi par les facteurs R et Rfree dont la diminution concomitante indique une amélioration globale du modèle sans modélisation de bruit de fond . La méthode de validation croisée écarte de l' affinement 5 - 10 % des données qui serviront à calculer le facteur Rfree ce qui permet une estimation objective du protocole d' affinement ( Brünger , 1993 ) . La géométrie des liaisons covalentes , les planarités , les angles dièdres avec notamment le diagramme de Ramachandran , les interactions non covalentes , les liaisons hydrogène , les ponts disulfures , la stéréochimie , ont été analysés et comparés à celles de structures bien définies de même résolution par le programme PROCHECK ( Laskowski et al. , 1993 ) . Partie III : Résultats Résultats : Chapitre 1 Caractérisation biochimique des protéines ? C-Brdt , BD1 et BD2 A . Analyse de la protéine ? C-Brdt I. Structure primaire La protéine ? C-Brdt comprend les résidus 2 à 442 de la protéine Brdt de souris . Son poids moléculaire théorique est de 50 kDa et son pH isoélectrique théorique est égal à 6 , 8 . Elle est constituée par deux bromodomaines nommés BD1 ( résidus 29 à 124 ) et BD2 ( résidus 264 à 368 ) entre lesquels se place une région longue de 130 résidus . Cette région charnière apparaît peu structurée par l' analyse de sa structure primaire . Elle est caractérisée par l' absence quasi totale de prédictions de structures secondaires et des probabilités de désordre importantes . Une région moins désordonnée existe probablement dans la partie centrale de la protéine . Quatre résidus ( 181 - 184 ) sont en effet prédits organisés en hélice ? et ont des probabilités de désordre plus basses que le reste de la région . Ces probabilités restent cependant plus hautes que dans les régions occupées par les bromodomaines . Les régions N et C terminales ( avant BD1 et après BD2 ) sont très probablement désordonnées . II . Comportement en solution La protéine s' est avérée soluble et facilement purifiable selon le protocole indiqué précédemment avec un rendement global après concentration de l' ordre de 10 mg / L de culture . La protéine est pourtant partiellement instable puisqu' elle subit une précipitation lors de son passage de 4 °C à température ambiante . La précipitation est réversible en une heure environ . L' analyse de la solution par diffusion statique de lumière a montré que la solution de protéine après sa renaturation présente les mêmes propriétés ( rayon hydrodynamique , monodispersité , absence d' agrégat ) que la solution avant précipitation . III . Recherche d' états oligomériques Pour les expériences de microcalorimétrie , il était important de connaître l' état oligomérique de la protéine en solution , en présence ou en absence de son ligand principal , le peptide H4 tétra-acétylé . La masse moléculaire et la polydispersité des espèces présentes dans une solution de ? C-Brdt à 8 mg / mL en présence et en absence du peptide H 4 - 4 ac ( dans un rapport 1 : 8 ) ont été déterminées par diffusion statique de lumière . Quel que soit la présence ou l' absence du peptide , les résultats indiquent que la protéine est un monomère de masse moléculaire 50 kDa et que la solution est monodisperse [ Figure 18 ] . D' autre part , la réaction de réticulation chimique à l' EGS réalisée sur un mélange de la protéine et du peptide H4 tétra-acétylé dans un rapport 1 : 10 ne provoque pas l' apparition de structures de taille supérieure à celles existant dans la solution native [ Figure 19 ] . L' analyse par spectrométrie de masse ( MALDI-TOF ) des échantillons ayant subi la réaction de couplage indique la présence de protéines aux masses 50 796 , 51 148 , 54 355 , 57 269 Da . Ces résultats sont incompatibles avec l' existence de formes multimériques de la protéine dans la solution et confirment ceux obtenus par diffusion statique de lumière . B . Analyse de la protéine BD1 Les différentes constructions de BD1 utilisées présentent un poids moléculaire compris entre 14 , 1 et 15 , 8 kDa et un pH isoélectrique compris entre 9 , 0 et 9 , 2 . I. Comportement en solution Le comportement en solution des protéines de la première série de clonages montre que les résidus 22 à 28 de l' extrémité N terminale interviennent dans la stabilisation du domaine [ Tableau 6 ] . La protéine SI- 3 débutant au résidu 28 est insoluble bien que la première hélice du domaine ne débute qu' au résidu 29 dans la structure que nous avons résolue . Nous verrons que ces résidus chapeautent la région charnière entre les boucles B et C et stabilisent par des interactions avec les hélices B et C la structure du bromodomaine . La deuxième série de clonage montre que les résidus 142 à 150 de l' extrémité C terminale stabilisent eux aussi la structure du bromodomaine puisque la protéine SII- 4 à haute concentration précipite lorsqu' elle est amenée à température ambiante alors que la protéine SII- 5 reste stable dans les mêmes conditions [ Tableau 6 ] . Les protéines sont produites avec un bon rendement ( 7 , 5 à 16 , 6 mg / L de culture ) sauf SII- 3 pour laquelle la faible production obtenue tient peut être à un problème lors de la mise en culture des bactéries ou lors de la purification . Ces protéines ont été utilisées pour réaliser les essais de cristallogénèse et les expériences de microcalorimétrie . La troisième série de clonage [ Tableau 6 ] a été utilisée exclusivement pour la cristallographie . Tableau 6 : Comportement en solution des différentes constructions de la protéine BD1 II . Recherche d' états oligomériques Une expérience de diffusion statique de lumière couplée à la chromatographie d' exclusion a été réalisée sur BD1 SI- 2 de poids moléculaire théorique 13 , 7 kDa . L' instabilité de la protéine à température ambiante provoque sa répartition sur un grand volume d' élution et une erreur importante sur la mesure de son poids moléculaire [ Figure 20 ] . Cependant le poids moléculaire déterminé ( 13 , 3 + / - 0 , 4 kDa ) indique que la protéine doit être monomérique dans les conditions de l' expérience . Nous n' avons pas observé de variation dans le poids moléculaire de BD1 ni en présence de BD2 ni en présence de BD2 et du peptide H4 tétra-acétylé . D' autre part des expériences de réticulation chimique sur une solution de BD1 montrent qu' aucune structure oligomérique ne se forme en présence ou en absence du peptide H4 tétra-acétylé [ Figure 21 ] . Nous pouvons observer dans le cas des expériences sur le mélange BD 1 / H 4 - 4 ac le dédoublement de la bande correspondant à BD1 . Cette seconde espèce de poids moléculaire légèrement supérieure correspond sans doute au complexe qui se forme entre le bromodomaine et le peptide . C . Analyse de la protéine BD2 La protéine BD2 ( clone A12 ) présente un pH isoélectrique égal à 6 , 05 . Son poids moléculaire théorique est de 14 , 9 kDa . Elle est très soluble et stable en solution . La production après purification et concentration est de 22 mg / L de culture environ . Une expérience de réticulation chimique [ Figure 22 ] montre que le domaine est monomérique en solution et qu' il ne se produit pas de dimérisation en présence du peptide H4 tétra-acétylé . Ces résultats sont en accords avec ceux obtenus par diffusion statique de lumière , où le poids moléculaire déterminé pour BD2 est de 15 + / - 0 , 1 kDa . D . Analyse du mélange des protéines BD1 et BD2 Par ailleurs aucune structure dimérique n' a été observée lorsque les domaines BD1 et BD2 sont mélangés , en présence ou en absence du peptide H4 tétra-acétylé , ni par réticulation chimique [ Figure 23 ] ni par diffusion statique de lumière [ Figure 20 ] . E . Analyse de la protéine BD1-K61Q Le comportement de la protéine BD1-K61Q ( clone Q61 - 2 ) en solution est similaire à celui de BD1 . La protéine est très soluble à 4 °C ou à basse concentration ( ~ 5 mg / mL ) , mais précipite si une solution à haute concentration ( ~ 40 mg / mL ) est portée à température ambiante . Nous avons obtenu par litre de culture environ 13 mg de protéine pure et après concentration . Résultats : Chapitre 2 Quantification des affinités de Brdt vis à vis des différents états d' acétylation des queues N terminales des histones H3 et H4 A . Expériences préliminaires Nous avons tout d' abord examiné l' affinité des bromodomaines 1 et 2 de Brdt pour des peptides courts ( 10 résidus ) mimant la queue N terminale de l' histone H4 mono-acétylée de souris sur les lysines 5 , 8 , 12 ou 16 [ Tableau 7 ] . Tableau 7 : Peptides H4 courts I. Affinités de BD1 pour des peptides H4 courts La titration des peptides sH 4 -K 5 ac et sH 4 -K 8 ac dans une solution de BD1 produit un dégagement de chaleur caractéristique d' une réaction de fixation [ Annexe 2A ] . Cependant il n' a pas été possible de déterminer les paramètres thermodynamiques de l' interaction . En fixant le nombre de sites égal à un ( n = 1 ) pour réduire le nombre des paramètres à affiner , il est tout de même possible d' obtenir une convergence des autres paramètres ( Ka et ? H ) . L' affinité déterminée de BD1 pour ces peptides est alors de l' ordre du milli-molaire . La réaction de titration des peptides sH 4 -K 12 ac et sH 4 -K 16 ac produit un signal en partie endothermique et dont le profil ne correspond pas à une réaction d' interaction entre un bromodomaine et un peptide acétylé [ Annexe 4A ] . Ces expériences indiquent qu' il existe entre BD1 et les peptides H4 courts mono-acétylés sur les lysines 5 et 8 une affinité faible non quantifiable par ITC . II . Affinités de BD2 pour des peptides H4 courts L' affinité de BD2 vis à vis des peptides sH 4 -K 5 ac , sH 4 -K 8 ac et sH 4 -K 12 ac a également été mesurée [ Annexe 4B ] . Nous n' avons pas détecté d' affinité significative pour ces peptides . En particulier , BD2 n' a pas montré d' affinité pour le peptide sH 4 acK 12 avec lequel il avait pourtant co-cristallisé . Nous verrons dans le chapitre 4 comment la structure cristallographique du complexe BD 2 / H 4 -K 12 ac peut expliquer cela . B . Affinités pour la queue N terminale de l' histone H4 Nous avons ensuite examiné l' interaction de BD1 et BD2 avec l' histone H4 tétra-acétylée ou di-acétylée sur les lysines K5 , K8 , K12 et K16 . Nous avons pour cela utilisé des peptides longs ( 20 résidus ) mimant la queue N terminale de l' histone H4 de souris [ Tableau 8 ] . Tableau 8 : Peptides H4 longs I. Affinités pour un peptide H4 tétra-acétylé a . ? C-Brdt L' interaction de la partie N terminale de Brdt ( ? C-Brdt ) et du peptide H4 tétra-acétylé est largement exothermique . Elle est caractéristique d' une réaction de fixation d' un peptide acétylé par un bromodomaine [ Annexe 4D et Figure 24 ] . La titration du peptide dans la solution tampon produit un signal endothermique constant . Nous avons soustrait sa régression linéaire aux données de la fixation . Les paramètres moyens issus de la répétition de quatre expériences indiquent une stoechiométrie de 1 : 1 entre le peptide et la protéine et une constante de dissociation ( Kd ) égale à 11 , 4 µM . b . BD1 La titration du peptide H 4 - 4 ac dans la solution de BD1 produit un dégagement de chaleur important [ Annexe 4C et Figure 24 ] . La régression linéaire du signal de la dilution du peptide a été soustraite aux données de la réaction de fixation . Les paramètres moyens issus de la répétition de quatre expériences permettent de déterminer un Kd de 28 ? M et une stoechiométrie de 1 : 1 entre le peptide H 4 - 4 ac et BD1 . Cette affinité est environ deux fois plus forte que celle observée pour ? C- Brdt . Aucun échange de chaleur significatif n' a été enregistré pour la titration d' un peptide non acétylé dans une solution de BD1 . Cela confirme que l' interaction est spécifique vis à vis de l' acétylation . c . BD2 La titration du peptide H4 tétra-acétylé dans une solution de BD2 produit un dégagement de chaleur faible [ Annexe 4D et Figure 24 ] . La réaction de dilution du peptide dans la solution tampon est au contraire exothermique . Même après la soustraction de ce signal , il n' a pas été possible de déterminer les paramètres de l' interaction . En fixant le nombre de sites égal à un ( n = 1 ) , la convergence des paramètres peut cependant être obtenue . L' affinité ainsi déterminée est de l' ordre du milli-molaire . d . Conclusion Il apparaît ainsi que l' interaction entre la partie N terminale de Brdt et la queue N terminale acétylée de l' histone H4 est réalisée par l' intermédiaire du premier bromodomaine BD1 et que cette interaction dépend de l' acétylation des lysines . II . Affinités de BD1 des peptides H4 di-acétylés Pour aller plus loin dans l' identification du motif reconnu par Brdt , nous avons mesuré l' affinité de BD1 pour différents peptides mimant la queue N terminale de l' histone H4 di-acétylée [ Tableau 8 ] . Quatre des cinq peptides testés ont montré un signal significatif après la soustraction de celui de la dilution du peptide . L' interaction la plus forte est mesurée pour le peptide H 4 -K 5 K 8 ac ( Kd = 21 , 9 µM ) . Les affinités déterminées pour les autres peptides di-acétylés sont 6 à 15 fois plus faibles ( 117 µM pour H 4 -K 12 K 16 ac ; 193 µM pour H 4 -K 8 K 12 ac et 340 µM pour H 4 -K 5 K 12 ac ) [ Figure 24 et Annexe 4E et 4F ] sauf pour le peptide H 4 -K 8 / K 16 ac , qui présente une affinité trop faible pour être mesurée [ Figure 25 et Annexe 2G ] . Ainsi BD1 fixe H 4 -K 5 / K 8 ac presque aussi bien que le peptide H4 tétra-acétylé . De façon surprenante , les résultats préliminaires , obtenus avec des peptides courts et mono-acétylés , n' avaient pas permis de détecter d' interaction entre BD1 et les peptides sH 4 -K 5 ac et sH 4 -K 8 ac . De plus nous avons vu que BD1 n' a pas d' affinité pour le peptide H4 non acétylé . Cela indique que BD1 a besoin pour fixer le peptide H4 que celui -ci soit au moins di-acétylé . Nous avons tout de même vérifié que le domaine ne montre pas d' affinité pour les peptides H4 long ( 20 mers ) mono-acétylés sur les lysines K5 ou K8 . Le signal obtenu suite à la titration de ces peptides est trop faible pour permettre la détermination des paramètres de l' interaction . Après la soustraction du signal de la dilution du peptide et en fixant le nombre de sites égal à 1 , l' affinité obtenue est de l' ordre de 1 mM pour H 4 -acK 5 et de l' ordre de 10 mM pour H 4 -acK 8 [ Figure 25 et Annexe 4G ] . III . Conclusion La di-acétylation apparaît ainsi comme le motif minimum essentiel à l' établissement d' une interaction entre BD1 et le peptide H4 . La di-acétylation K 5 / K 8 ac étant préférentiellement reconnue . Le classement des peptides selon leurs affinités montre que l' affinité décroît quand la distance entre les deux lysines acétylées augmente ( K 5 / K 8 ac > K 12 / K 16 ac ? K 8 / K 12 ac > K 5 / K 12 ac > K 8 / K 16 ac ) . C . Affinités pour la queue N terminale de l' histone H3 Nous avons ensuite examiné l' interaction des bromodomaines de Brdt avec la queue acétylée de l' histone H3 . Nous avons pour cela utilisé une collection de peptides longs ( 23 résidus ) mimant la queue N terminale de l' histone H3 de souris [ Tableau 9 ] . Tableau 9 : Peptides H3 longs I. Affinités de BD1 et BD2 pour un peptide H3 tétra-acétylé Les domaines BD1 et BD2 montrent après soustraction du signal de la dilution du peptide , des affinités pour le peptide H3 tétra-acétylé respectivement égales à 390 µM et 214 µM et des stoechiométries de 1 : 1 entre le peptide et la protéine [ Annexe 4H ] . En comparaison , l' affinité de BD1 pour la queue H4 est environ dix fois supérieure . BD2 en revanche reconnaît préférentiellement la queue H3 tétra-acétylée mais n' interagit pas avec H4 tétra-acétylé . Aucun échange de chaleur ne résulte de la réaction contrôle de titration du peptide H3 non acétylé dans une solution de BD2 . Cela indique que l' interaction de BD2 et de la queue N terminale de H3 est spécifique vis-à-vis de l' acétylation [ Figure 27 ] . II . Affinités de BD2 pour des peptides H3 mono et di-acétylés Pour déterminer précisément le motif d' acétylation reconnu par BD2 sur la queue de l' histone H3 , nous avons procédé à des expériences similaires en utilisant des peptides mono et di-acétylés . Les expériences de titration des peptides H3 diacétylés sur les lysines K14 / K23 ou K9 / K14 , et mono-acétylés sur K14 ou K23 n' ont pas permis de déterminer les paramètres d' une interaction [ Annexe 4I ] . Il existe cependant un dégagement de chaleur associé à l' injection des peptides H 3 -K 9 / K 14 ac et H 3 -K 14 / K 23 ac qui ne peut pas être expliqué par la seule réaction de dilution du peptide . Même en fixant le nombre de sites égal à un , il n' a pas été possible d' obtenir de solution satisfaisante à l' affinement des paramètres de la liaison . L' affinité de BD2 pour ces peptides doit en conséquence être supérieure à 1 mM . En revanche , nous avons pu déterminer l' affinité de BD2 pour les peptides H 3 -K 18 ac , H 3 -K 9 / K 18 ac et H 3 -K 14 / K 18 ac ( Kd respectivement égaux à 251 µM , 519 µM et 217 µM ) [ Annexe 4J et 4K ] . Ces affinités sont comparables entre elles et similaires à celle observée pour le peptide H3 tétra-acétylé ( 214 µM ) [ Figure 27 ] . Il semble donc que le motif minimum nécessaire à l' interaction de BD2 et de la queue N terminale de l' histone H3 soit l' acétylation de la lysine K18 . D . Affinités de la protéine BD1-K61Q Les résultats obtenus pour la protéine BD1 portant la mutation K61Q ressemblent à ceux obtenus pour la protéine sauvage . BD1-K61Q fixe le peptide H3 tétra-acétylé avec une affinité 18 fois plus faible ( Kd = 275 µM ) par rapport aux peptides H4 tétra-acétylé et H 4 -K 5 / K 8 ac , pour lesquels il présente des affinités similaires ( 15 , 7 µM et 14 , 9 µM ) . Son affinité pour les peptides H4 mono-acétylés sur les lysines K5 et K8 est trop faible pour être mesurée [ Annexes 4L et 4M ] . Ainsi , le mutant BD1-K61Q présente une spécificité vis des queues N terminale de H3 et H4 similaire à celle de la protéine BD1 sauvage . La mutation K61Q entraîne même une légère augmentation globale des affinités mesurées pour H3 et H4 ( de 21 µM à 15 µM pour H 4 - 4 ac et de 390 µM à 275 µM pour H 3 - 4 ac ) . Ce qui entraîne chez la protéine Brdt-K61Q une diminution de la différence qui existait entre les affinités de BD1 et BD2 vis-à-vis de la queue N terminale tétra-acétylée de H3 ( 275 µM pour BD1 et 214 µM pour BD2 chez le mutant contre 390 µM pour BD1 et 214 µM pur BD2 chez la protéine sauvage ) . Résultats : Chapitre 3 Structures cristallographiques des bromodomaines de Brdt en complexe avec les queues d' histones H3 et H4 A . Structure de BD1 en complexe avec un peptide acétylé mimant la queue N terminale de l' histone H4 I. Cristallisation de BD1 en complexe avec les peptides H4 tétra-acétylé et H 4 -K 5 K 8 ac Pour obtenir une protéine soluble et stable à 20 °C , qui cristallise et dont les cristaux soient de qualité suffisante , nous avons testé 10 clones différents de BD1 [ Tableau 10 ] . La construction initiale A11 , issue d' un projet de cristallisation à haut débit , n' avait pas permis d' obtenir de cristaux . Les bornes de la première série de clones ( SI ) ont été choisies d' après une estimation du début et de la fin du domaine réalisée par l' alignement de la séquence primaire du domaine avec celles d' autres bromodomaines . La structure des bromodomaines de Gcn 5 ( Owen et al. , 2000 ) , PCAF ( Mujtaba et al. , 2002 ) , CBP ( Mujtaba et al. , 2004 ) , TAFII250 ( Jacobson et al. , 2000 ) et Brdt-BD2 ( nos données ) étant connue , nous avons pu en déduire approximativement les limites du domaine . Nous avons utilisé ces limites comme bornes pour nos constructions . La construction 28 - 136 s' est avérée insoluble , la construction 25 - 136 partiellement soluble mais instable . Seule la construction 22 - 136 s' est avérée soluble et stable à haute concentration ( environ 30 mg / mL ) . Cette construction n' ayant pas cristallisé , une seconde série de clonages à été réalisée . Pour la seconde série de clonages , nous nous sommes appuyé sur une modélisation de la structure du domaine , prenant comme modèle la structure de l' homologue Brd 2 BD1 [ PDB : 1XOJ ] récemment cristallisé ( Nakamura et al. , 2007 ) . Les bornes E17 ou K23 ont été retenues pour l' extrémité N terminale et K142 , Q150 ou A154 à l' extrémité C terminale . Tableau 10 : Clones de BD1 réalisés pour la cristallisation De ces six constructions , cinq ont été testées . La construction 23 - 150 a permis d' obtenir des cristaux du domaine en complexe avec le peptide H4 tétra-acétylé ( 20 résidus ) . Ces cristaux ont été reproduits manuellement en utilisant un mélange contenant 20 mg / mL de protéine et soit le peptide H4 tétra-acétylé soit le peptide H 4 -K 5 K 8 ac ( 20 résidus ) . Le rapport entre la protéine et le peptide varie de 1 : 2 à 1 : 5 . Les cristaux , de forme rhomboédrique et pouvant atteindre 300 µm x 300 µm x 100 µm ont été obtenus en 2 à 3 jours dans plusieurs conditions contenant de 1 , 1 à 1 , 2 M K2HPO4 et 0 , 02 à 0 , 2 M NaH 2 PO 4 . Cependant , malgré la variation des conditions de congélation , leur diffraction n' a pas permis d' obtenir de jeu de données dont la résolution dépasse 6 Å. Les cristaux , montés dans un capillaire contenant la solution mère , ont été exposés aux rayons X sans congélation . Les images obtenues étant similaires à celles obtenues après congélation , nous avons conclu qu' ils présentaient un désordre intrinsèque , indépendant d' une éventuelle dégradation due à la congélation , qui explique leur mauvaise diffraction . Attestant d' une structure cristalline peu stable , on observe que les cristaux commencent à se dissoudre après une semaine environ . Pour tenter d' améliorer la diffraction nous avons sans résultat déshydraté les cristaux par bain prolongé dans le cryoprotectant . Nous avons également reproduit ces cristaux en ajoutant 5 à 10 % d' éthylène glycol dans la condition de cristallisation . Les cristaux ont vu leur croissance ralentie : une semaine environ au lieu des 2 - 3 jours sans additif . Ils ont également commencé à se dégrader plus tardivement . Cependant leur diffraction n' a pas connu d' amélioration notable . Dans une troisième série de clonage nous avons utilisé les bornes 12 - 136 et 17 - 136 , bornes utilisées pour cristalliser Brd 4 [ pdb : 2OSS ] et Brd 3 [ pdb : 2NXB ] , deux structures récemment publiées dans la banque de données PDB . Un cristal rhomboédrique d' environ 150 µm de long [ Figure 27A ] a été obtenu au robot de cristallisation pour le domaine 12 - 136 à une concentration de 15 mg / ml en mélange avec le peptide H4 tétra-acétylé ( 20 résidus ) dans un rapport 1 : 1 , 7 dans la condition 2 , 4 M ammonium sulfate , 0 , 1 M MES pH 6 . Ce cristal a été congelé dans l' azote liquide après un bain dans une solution de cryoprotection ( 2 , 4 M ammonium sulfate , 0 , 1 M MES pH 6 , 0 , 30 % glycerol ) . Bien que les images de diffraction indiquent un désordre interne important [ Figure 27B ] , ces cristaux ont permis d' obtenir un jeu de données à 2 , 63 Å de résolution . Pour améliorer la résolution , nous avons cherché à obtenir d' autres cristaux en criblant les 96 conditions contenant toutes de l' ammonium sulfate du screen « Nextal amonium sulfate » . Des cristaux ont été obtenus pour les domaines 12 - 136 et 17 - 136 en mélange avec les peptides H 4 -K 5 K 8 ac long ( 20 résidus ) et H 4 -K 5 K 8 ac court ( 16 résidus ) dans des rapports molaires allant de 1 : 2 à 1 : 20 entre la protéine et le peptide . Une vingtaine de conditions différentes ont mené à la cristallisation . La diffraction des cristaux les plus prometteurs a été testée aux rayons X sur la ligne microfocus ID 23 -eh 2 . Un de ces cristaux , obtenu avec la construction 17 - 136 à une concentration de 15 mg / mL en mélange avec le peptide H 4 -K 5 K 8 ac ( 20 résidus ) dans un rapport molaire 1 : 20 , dans la condition 2 , 4 M ammonium sulfate , 0 , 1 M Hepes pH 7 [ figure 28A ] , congelé dans 2 , 4 M ammonium sulfate , 0 , 1 M Hepes pH 7 , 30 % glycérol , a permis de collecter sur la ligne microfocus ID23 - 2 un jeu de données allant jusqu'à 2 , 37 Å malgré une diffraction faible et la présence de plusieurs réseaux superposés [ Figure 28B ] . II . Résolution des structures cristallographiques de BD1 en complexe avec les peptides H4 tétra-acétylé et H 4 -K 5 K 8 ac a . Structure de BD1 en complexe avec le peptide H4 tétra-acétylé Un jeu de données à 2 , 63 Å a été collecté à L' ESRF ( Synchrotron Radiation Facility ) sur la ligne microfocus ID 23 -eh 2 . Les données ont été intégrées et mises à l' échelle avec la suite de programmes XDS / XSCALE ( Kabsch , 1993 ) . Les valeurs statistiques du jeu de données sont indiquées ci-dessous [ Tableau 11 ] . Tableau 11 : Statistiques des données cristallographiques . La structure a été résolue par la technique du remplacement moléculaire à l' aide du programme MolRep de la suite CCP4 ( Collaborative Computational Project , 1994 ) . La structure tridimensionnelle de l' homologue Brd 4 [ PDB 2 OOS ] a été utilisée comme modèle . Deux solutions ont été obtenues ( facteur R = 0 , 572 et 0 , 576 ) . Ce qui est cohérent avec le résultat du calcul de l' état d' hydratation du cristal selon Matthews qui indique que l' unité asymétrique contient le plus probablement 2 molécules , avec un pourcentage d' hydratation de 52 , 6 % [ Tableau 12 ] . Tableau 12 : Calcul du coefficient de Matthews ( Mcoef. = V / M.Z avec V : volume de la maille , M : masse moléculaire de la protéine et Z : nombre de molécules dans la maille ) . Dimensions de la maille orthorhombique : a = 49.4 Å = 60.2 = 60.2 = 98.1 Å ? = ? = ? = 90 ° , MW = 14.2 Kda Pour déterminer le groupe d' espace , le remplacement moléculaire a été réalisé dans tous les groupes d' espaces orthorhombiques . Après comparaison des résultats , le groupe P212121 a été choisi car il donne clairement la meilleure solution . Un premier affinement constitué de 20 cycles d' affinement où chaque monomère est considéré comme un corps rigide avec le programme MolRep de la suite CCP4 , suivi de 10 cycles d' affinement restreint avec le programme Refmac ( Murshudov et al. , 1997 ) , aboutit à un modèle dont les facteurs R et Rfree sont respectivement égaux à 0 , 287 et 0 , 388 . Le calcul des cartes associées au modèle indique clairement la présence d' une densité atomique continue dans le site de liaison du bromodomaine [ Figure 29 ] . Nous avons poursuivi cet affinement avant la construction du peptide . Il a été constitué de cycles de calculs avec le programme CNS ( Brünger et al. , 1998 ) et de modifications manuelles du modèle réalisées avec le programme COOT ( Emsley and Cowtan , 2004 ) . Chaque phase calcul porte sur l' affinement de la géométrie ( incluant des contraintes de symétrie non cristallographique entre les deux monomères ) et de l' affinement des facteurs B . La densité obtenue a permis de placer facilement les deux résidus acétyl-lysine mais compte tenu du fait que le peptide porte 4 acéty-lysines Il n' est pas exclu que nous observions la densité moyenne de plusieurs modes de liaison . Cependant il existe pour la leucine L10 une densité bien visible qui nous a fait privilégier les séquences K ( ac ) GGK ( ac ) G ( molécule 1 ) et AGK ( ac ) GGK ( ac ) G ( molécule 2 ) où les acétyl-lysines 5 et 8 occupent le site de fixation . Ceci est en accord avec les résultats d' ITC qui indiquent que BD1 présente pour le peptide di-acétylé H 4 -acK 5 , 8 la meilleure affinité . Structure de BD1 en complexe avec le peptide H 4 -acK 5 , 8 Pour lever le doute sur l' assignation de la séquence du peptide nous avons résolu la structure de BD1 en complexe avec un peptide mimant la queue de l' histone H4 uniquement acétylé sur les lysines 5 et 8 ( H 4 -acK 5 , 8 , 20 mers ) . Un jeu de données à 2 , 37 Å a été obtenu sur la ligne microfocus ID 23 -eh 2 de l' ESRF . Les cristaux présentaient une mauvaise diffraction : diffraction circulaire au centre du cristal , diffraction faible , plusieurs réseaux superposés , perte rapide de diffraction . Plusieurs séries d' images complémentaires ont été collectées en irradiant différents volumes à la périphérie du cristal . De ces images a été conservé le plus petit nombre nécessaire pour obtenir des statistiques satisfaisantes lors de l' intégration et de la mise à l' échelle réalisées avec XDS et XSCALE . Le choix des images ainsi fait , les dimensions de la maille ont été recalculées en tenant compte des résultats obtenus pour chaque série d' images et la mise à l' échelle a été recalculée avec ces nouvelles dimensions . Les statistiques finales sont indiquées dans le tableau ci-dessus [ Tableau 11 ] . Pour résoudre la structure , nous avons utilisé les phases de la structure de BD1 obtenue précédemment , dont les résidus 12 à 16 , les molécules d' eau et les peptides ont été supprimés . Après un premier affinement constitué de 20 cycles d' affinement comme corps rigide à 4 Å , 10 cycles d' affinement comme corps rigide à 2 , 7 Å et 10 cycles d' affinement restreint , les facteurs R et Rfree étaient respectivement égaux à 0 , 257 et 0 , 320 . Une densité continue indiquait clairement la présence du peptide dans le site actif de chaque monomère [ figure 30 ] . La densité des deux acétyl-lysines et de la leucine 10 de la chaîne B étant bien visibles , nous avons en premier lieu construit le peptide avec l' AcK 5 dans le site principal . Les facteurs R et Rfree du modèle final sont respectivement égaux à 0 , 204 et 0 , 248 . Pour vérifier que la direction choisie était la bonne , le peptide a été construit avec l' acK 8 dans le site principal . Reflétant une plus grande divergence entre la densité et le modèle , les facteurs R et Rfree sont moins bons ( respectivement égaux à 0 , 219 et 0 , 280 ) . Ces résultats confirment la direction du peptide avec l' acK 5 qui occupe le site principal . III . Arrangement dans l' unité asymétrique La structure de BD1 en complexe avec le peptide H4 tétra-acétylé et celle en complexe avec le peptide H 4 -K 5 K 8 ac sont parfaitement superposables et présentent un r . m . s . d entre C ? pour 220 atomes ( résidus 27 - 136 des chaînes A et B ) égal à 0.25 Å [ Figure 31 ] . Dans les deux cas chaque unité asymétrique contient deux molécules de BD1 formant un dimère dont les molécules A et B sont superposables avec un r . m . s . d entre C ? pour 110 atomes ( résidus 27 à 136 ) égal à 0 , 26 Å. Un peptide est présent dans chaque site de liaison des bromodomaines A et B. Ils forment respectivement les chaînes Q et P . Le tableau 13 résume la composition des chaînes protéiques présentes dans les deux structures . Tableau 13 : Constitution des chaînes présentes dans les structures cristallographiques Les peptides P et Q sont superposables avec un r . m . s . d entre C ? pour 8 résidus ( résidus 5 à 8 , molécules P et Q ) de 0 , 49 Å. Au delà des résidus 5 à 8 , des divergences apparaissent entre les chemins suivis par les peptides P et Q [ Figure 31 ] . Il existe probablement pour les résidus en dehors du site de liaison une grande flexibilité qui peut expliquer la divergence des chaînes et la disparition de la densité . Dans le cas de la structure de BD1 en complexe avec le peptide H 4 -K 5 K 8 ac , un peptide supplémentaire ( chaîne R ) a été construit . Il correspond très probablement aux résidus Ala- 2 et Met- 1 ( venant du vecteur de clonage ) et Glu 17 , Tyr 18 ( premiers résidus de la construction ) . Ces résidus sont visibles dans le cas de la molécule B mais la densité n' a pas permis d' assigner la séquence exacte . Le peptide occupe la même place que les résidus 15 à 18 de BD1 ( 12 - 136 ) , à l' interface entre la molécule B et une molécule A appartenant à une unité asymétrique voisine [ Figure 32 ] . Le fait qu' il existe pour ces 4 résidus une densité alors que les résidus 19 à 26 suivant ne sont pas définis ( ou le sont mal ) confirme le fait que cette partie N terminale de la protéine participe à la constitution de l' interface et se trouve ainsi stabilisée . La présence d' un peptide à cet endroit conditionne probablement la formation de l' empilement cristallin tel que nous l' observons . Nous avons observé lors de la purification des protéines que les résidus 22 à 27 confèrent à BD1 une meilleure stabilité . Cette partie de la molécule forme une boucle qui chapeaute le bromodomaine [ Figure 33 ] . La lysine K23 établit une liaison hydrogène avec la chaîne latérale du résidu Y86 de la région située entre les boucles B et C et un pont salin avec l' acide glutamique E92 de la boucle C , le résidu R26 forme une liaison hydrogène avec la chaîne latérale du résidu Y87 de la boucle entre les hélices B et C , et la thréonine T28 établit une liaison ionique avec la glutamine Q134 de l' extrémité C terminale de la seconde molécule du dimère . Cet ensemble d' interactions rigidifie très probablement le repliement du bromodomaine et peut expliquer que les protéines BD1 qui commencent aux résidus 25 et 28 soient respectivement instable et insoluble . IV . Architecture de BD1 BD1 présente un repliement classique de bromodomaine , exclusivement constitué d' hélices , de tours et de boucles . L' assignement des structures secondaires par le programme DSSP ( Kabsch , 1983 ) indique cinq hélices alpha : ? Z ( résidus 29 - 44 ) , ? A' ( résidus 65 - 68 ) , ? A ( résidus 75 - 83 ) , ? B ( résidus 90 - 107 ) , ? C ( résidus 113 - 124 ) et une hélice 310 : ? Z' ( résidus 49 - 51 ) . Ces hélices sont identiques chez les deux molécules du dimère . Les hélices Z , A , B et C sont empilées et forment le coeur allongé du domaine . Les extrémités N et C terminales de la chaîne protéique sont rassemblées d' un côté . A l' opposé , les boucles ZA ( résidus 45 - 74 ) et BC ( résidus 108 - 112 ) forment le site de liaison du peptide [ Figure 34 ] . Une troisième structure en hélice notée ? D est assignée pour les résidus 57 à 60 de la boucle ZA par le programme de calcul de structure secondaire DSS de PyMol . Cette hélice implique une insertion de résidus propre à la famille des protéines BET . Elle est présente chez Brd 2 -BD2 ( Huang et al. , 2007 ) , Brd 4 -BD2 [ PDB : 2OUO ] et Brd 2 -BD1 ( Nakamura et al. , 2007 ) chez qui elle présente les caractéristiques d' une hélice ? ( 4 , 4 résidus par tour , diamètre réduit de 2 , 8A , ( Rajashankar and Ramakumar , 1996 ) ) . V. Surfaces et interactions du complexe BD 1 / H 4 -K 5 K 8 ac a . La surface de BD1 Le calcul des charges électrostatiques existant à la surface de BD1 a été réalisé en appliquant la fonction de potentiels « Amber » à tous les atomes de BD1 en utilisant le logiciel APBS George Lerner ) . Il met en évidence la polarité du bromodomaine , avec une face électronégative qui forme dans le cristal l' interface du dimère et une face électropositive , tournée dans le cristal vers le solvant [ Figure 35 ] . b . Interaction entre les molécules A et B du dimère L' interface entre les molécules A et B occupe environ 18 % de la surface accessible au solvant de chaque monomère avec une surface d' interaction de 1280 A2 . D' après l' analyse de PISA ( Krissinel and Henrick , 2007 ) , un outil d' analyse des interfaces et de prédiction des éventuelles structures quaternaires proposé par l' Institut Européen de Bioinformatique , les résidus constituant l' interface sont : Sur l' ensemble de ces résidus , 13 sont de nature hydrophobe , soit 43 , 3 % de la totalité . Entre les deux molécules s' établissent 14 liaisons hydrogène [ Tableau 14 ] . Aucune interaction ionique ( ponts salins ) ni autre liaison de plus haute énergie n' est observée . Globalement l' interaction est donc stabilisée par des forces hydrophobes et des liaisons polaires de faible énergie . Avec un gain d' énergie libre de solvatation ( ? G = - 8 , 1 kcal / mol ) associé à la formation du complexe , PISA conclut que le dimère AB doit être stable en solution . Cependant nous n' avons pas pu observer cette dimérisiation expérimentalement . Tableau 14 : Liaisons hydrogène entre les molécules A et B c . Interaction entre BD1 et le peptide i . Interaction entre la molécule B et le peptide P Avec 498 A2 , l' interface entre la molécule B et le peptide H 4 -K 5 K 8 ac représente 6 , 9 % de la surface accessible au solvant du bromodomaine et 50 % de celle du peptide . Le site de fixation des acétyl-lysines est essentiellement hydrophobe . Il est formé en surface par un sillon constitué par les résidus W49 , P50 , I114 , M117 et L60 dans lequel se place la chaîne latérale de l' acK 8 [ Figure 36 ] . Il existe dans cette partie un réseau de liaisons hydrogène liant le carbonyle du groupe acétyle de l' acK 8 , une molécule d' eau ( W6 ) , l' amine du groupe acétyle de l' acK 5 et le carbonyle de la proline 50 [ Figure 38 ] . Le site est ensuite constitué d' une cavité dont les dimensions avoisinent 12 Å de long et 5 Å de large [ Figure 37 ] . La première partie de la cavité est formée par les résidus I114 , N108 , Y107 , P50 , F51 , Q53 , P54 , V55 , L60 , L62 et Y65 [ Figure 36 ] . Elle est occupée par la chaîne latérale de l' acK 5 qui établit une liaison hydrogène avec l' amine de l' asparagine 108 via son groupe carbonyle . La partie profonde de la cavité est ensuite occupée par cinq molécules d' eau qui forment un important réseau de liaisons hydrogène auquel participe l' acK 5 . Ce réseau implique le groupe carbonyle de l' acétyle de l' acK 5 , les cinq molécules d' eau et les résidus Y65 , C104 , N103 , M73 , M100 et Q53 [ Figure 38 ] . Les résidus P54 , Y66 , I69 , P72 et D74 participent également à la constitution du fond de la cavité . La chaîne principale du peptide se place au contact d' une surface électropositive constituée par les résidus D64 , Y107 , N108 , G111 , D112 et D113 formant un demi-cercle autour du site de fixation des acétyl-lysines . Dans sa partie N terminale le peptide n' établit pas d' interaction directe avec le bromodomaine . Les amines des liaisons peptidiques des résidus G4 , acK 5 et G6 se placent cependant en regard du groupe acide de l' acide aspartique D112 [ Figure 36 ] . C' est par l' intermédiaire de deux molécules d' eau ( W92 et W108 ) que l' amine de l' acK 5 et le carbonyle de la glycine 6 forment des liaisons hydrogène avec les chaînes latérales des résidus D112 et N108 et avec les chaînes principales des résidus I114 et D113 [ Figure 38 ] . La partie C terminale du peptide vient ensuite s' enrouler autour du relief électronégatif que forme le groupe acide de l' aspartate D113 [ Figure 36 ] . L' amine de la liaison peptidique de l' acK 8 , celui de la glycine G9 et celui de la leucine L10 forment des liaisons hydrogène avec ce groupe acide [ Figure 38 ] . La chaîne latérale de la leucine L10 s' enfouit dans un site hydrophobe constitué par les résidus F47 , V116 et M117 [ Figure 36 ] . Ainsi le peptide est stabilisé uniquement par des interactions polaires et hydrophobes . Cependant , avec un gain d' énergie libre de solvatation ( ? G = - 9 , 8 kcal / mol ) associé à la formation du complexe BP , PISA conclut que le complexe BP est stable en solution , ce que nous avons pu observer et quantifier expérimentalement . ii . Interaction entre la molécule A et le peptide Q L' interface et les interactions entre la molécule A et le peptide Q sont très similaires à celles qui existent entre la molécule B et le peptide P. L' interface de 498 Å 2 , implique les mêmes résidus que pour la molécule B plus P63 , E64 , M100 mais n' implique pas les résidus F47 et V116 . Jusqu'au résidu G9 , le peptide est parfaitement superposable au peptide P et présente les mêmes interactions que lui . Cependant le peptide Q compte dans sa partie N terminale un résidu visible de plus , l' arginine R3 , qui établi des liaisons hydrogène avec les résidus N36 et Q32 d' une molécule symétrique . Le peptide Q présente également une conformation différente à son extrémité C terminale . En effet le site hydrophobe dans lequel se loge la leucine L10 du peptide P se trouve ici occupé par la valine V58 d' une molécule symétrique . Un changement de conformation de la glycine G9 permet à la chaîne Q d' obliquer à angle droit par rapport au chemin suivi par la chaîne P. La leucine L10 vient dans ce cas se stabiliser au contact d' une molécule symétrique . Cette dernière conformation ne reflète probablement pas une situation physiologique . Elle ne sera donc pas discutée en détail . Avec un gain d' énergie libre de solvatation ( ? G = - 7 , 5 kcal / mol ) associé à la formation du complexe , le serveur PISA conclut que le complexe AQ est stable en solution . B . Structure de BD2 en complexe avec plusieurs peptides acétylés . Les premières structures de BD2 et du complexe BD 2 / H 4 -K 12 ac ont été obtenues par M. Soler dans le cadre d' un projet de cristallisation à haut débit . Le clone A12 issu de ce projet , codant pour les résidus 275 à 382 , a ensuite été utilisé pour améliorer les cristaux du domaine en complexe avec le peptide H 4 -K 12 ac et pour les co-cristallisations de BD2 avec les peptides H 4 -K 5 ac , H 4 -K 8 ac , H 4 -K 16 ac , H3 tétra-acétylé tétra-acétylé et H 3 -K 18 ac [ Tableau 15 ] . Tableau 15 : Séquence des peptides utilisés pour les co-cristallisations Seules les structures de BD2 en complexe avec les peptides H 4 -K 12 ac et H 3 -K 18 ac s' avèrent contenir le peptide et présenter pour lui une densité susceptible d' être interprétée . Nous présenterons dans ce chapitre la structure de BD2 en complexe avec H 3 -K 18 ac car c' est celle qui correspond le plus probablement au complexe physiologique . Nous n' avons en effet pas pu mesurer d' affinité entre BD2 et l' histone H4 en solution . La structure en complexe avec H 4 -acK 12 sera décrite dans la discussion . I. Cristallisation de BD2 en complexe avec des peptides H3 et H4 Le domaine BD2 seul ou en complexe avec un peptide acétylé cristallise dans de nombreuses conditions différentes . A chaque criblage des six fois 96 conditions de cristallisation , nous avons obtenu des cristaux dans une soixantaine de conditions sur lesquelles une dizaine ont permis d' obtenir des cristaux de taille satisfaisante . Les cristaux les plus prometteurs ont été cryogénisés dans l' azote liquide après un passage dans une solution de cryoprotection de composition identique à la solution mère additionnée de 15 à 30 % de glycérol . Les cristaux choisis pour collecter ont été obtenus dans des conditions similaires , indiquées dans le tableau ci-dessous [ Tableau 16 ] . Tableau 16 : Conditions de cristallisation de BD2 et de ses complexes II . Résolution des structures de BD2 en complexe avec des peptides H3 et H4 Pour les structures en complexe avec les peptides H 4 -K 5 ac , H 4 -K 8 ac , H 4 -K 12 ac et H 4 -K 16 ac , l' intégration des données et la mise à l' échelle ont été réalisées avec les programmes Mosflm ( Leslie , 2006 ) et Scala de la suite CCP4 ( Collaborative Computational Project , 1994 ) . Pour les structures en complexe avec H 3 -K 18 ac et H3 tétra-acétylé nous avons utilisé pour le traitement des données les programmes XDS et XSCALE ( Kabsch W. , 1993 ) . Les groupes d' espace et les paramètres de maille des cristaux sont résumés dans le tableau ci-dessous [ Tableau 17 ] . Les structures ont été déterminées par la technique du remplacement moléculaire avec le programme MolRep en utilisant comme modèle de départ la structure de BD2 sans ligand . A chaque fois , deux molécules par unité asymétrique ont été trouvées . A l' issue du remplacement moléculaire les modèles ont été affinés avec MolRep en considérant chaque monomère comme un corps rigide . Les cartes de densité atomique calculées à ce stade indiquent clairement la présence d' un peptide dans le site de fixation de BD2 dans le cas des cristallisations avec les peptides H 4 -K 12 ac , H3 tétra-acétylé et H 3 -K 18 ac . Dans le cas du complexe avec le peptide H3 tétra-acétylé , la résolution ne permet pas d' assigner la séquence du peptide qui occupe le site actif . En effet seuls 5 résidus sont visibles sur les 23 que compte le peptide . Mais si nous superposons cette densité à celle obtenue pour le complexe avec le peptide H 3 -K 18 ac il est facile de constater que celles -ci correspondent très probablement aux mêmes résidus . Cela confirme la préférence de BD2 pour une acétylation de l' histone H3 en position K18 . Dans le cas des co-cristallisations avec les peptides H 4 -K 5 ac , H 4 -K 8 ac et H 4 -K 16 ac , nous observons dans le site de fixation une densité atomique positive non continue mais celle -ci est réduite à ce qui correspondrait à la présence de la chaîne latérale de la lysine acétylée . Il pourrait aussi bien s' agir de molécules d' eau venant remplir la cavité hydrophobe du site de fixation . Le groupe d' espace de ces structures , identique à celui de la structure de BD2 sans ligand , et différent de celui des structures de BD2 contenant un peptide , semble indiquer que le peptide est absent . Tableau 17 : Principales caractéristiques des cristaux de BD2 . L' affinement de la géométrie et des facteurs B des modèles a été mené en utilisant le programme CNS ( Brünger et al. , 1998 ) . Il a été réalisé en alternance avec les étapes de modifications manuelles en utilisant le programme COOT ( Emsley et Cowtan , 2004 ) , et complété par des étapes de dynamique moléculaire ou recuit simulé en utilisant le programme CNS . La géométrie a été vérifiée par le programme Procheck de la suite CCP4 . Les statistiques de la collecte des données et de l' affinement des modèles de BD2 et de ses complexes avec les peptides H 4 -K 12 ac et H 3 -K 18 ac sont présentées dans le tableau ci-dessous [ Tableau 18 ] . Tableau 18 : Statistiques des données cristallographiques . III . Structure de BD2 en complexe avec le peptide H 3 -K 18 ac a . Structure globale et arrangement dans l' unité asymétrique Les deux molécules de l' unité asymétrique forment un dimère dont les sites de fixation se trouvent à l' opposé l' un de l' autre [ Figure 39 ] . Chaque monomère lie un peptide H 3 -K 18 ac , représentés par les chaînes X et Y. Les deux molécules du dimère montrent un repliement parfaitement similaire , y compris dans les régions flexibles des boucles ZA et BC . Les monomères sont superposables avec un r . m . s . d ( déviation moyenne ) sur les 112 C ? des résidus 265 à 376 égal à 0 , 35 Å et un r . m . s . d sur les 6 C ? des résidus 16 à 21 des peptides X et Y égal à 0 , 30 Å. Le peptide Y présente à ses extrémités N et C terminales respectivement un et deux résidus supplémentaires définis par rapport au peptide X [ Tableau 19 ] . Tableau 19 : Résidus définis dans la structure du complexe BD2 : H 3 -acK 18 L' architecture de BD2 est celle d' un bromodomaine classique constitué des 4 hélices alpha principales [ ? Z ( résidus 264 - 289 ) , ? A ( res 318 - 326 ) , ? B ( res . 333 - 343 ) , ? C ( res . 352 - 368 ) ] qui forment un bras rigide et de deux boucles ZA et BC qui forment le site de fixation du peptide . La longue boucle ZA ( résidus 289 - 318 ) contient elle-même 3 hélices secondaires : ? Z' ( 285 - 296 ) , ? D ( res . 300 - 304 ) et ? A' ( 308 - 311 ) . La boucle BC ( résidus 343 - 352 ) est beaucoup plus courte . Le calcul des potentiels électrostatiques existant à la surface de BD2 en appliquant la fonction de Amber à tous les atomes avec le programme APBS implémenté dans Pymol ( W. L. DeLano. , 2002 ) met en évidence une surface électronégative constituée par les résidus exposés allant de la seconde partie de la boucle ZA jusqu'au milieu de l' hélice ? B. BD1 présente également une large région chargée positivement mais celle -ci concerne la surface de l' hélice ? A et celle de la partie centrale des hélices ? B et ? C . Cette surface constitue l' interface entre les deux molécules du dimère dans les cristaux de BD1 alors que dans le cas de BD2 l' interface du dimère apparaît peu chargée [ Figure 40 ] . La superposition des structures de BD2 , du complexe BD 2 / H 3 -K 18 ac et du complexe BD 2 / H 4 -K 12 ac montre que seule la boucle ZA subit un changement de conformation suite à la fixation du peptide . Ces changements de conformation illustrent bien le rôle d' adaptation au substrat joué par la boucle ZA . En revanche , aucun changement ne survient dans la boucle BC suite à la fixation des peptides [ Figure 41 ] . La flexibilité de la seconde partie de la boucle ZA est encore mise en évidence par l' examen des facteurs B de ses atomes , plus élevés que ceux des atomes de la boucle BC et du corps du bromodomaine [ Figure 42 ] . b . Interaction entre les deux molécules du dimère Avec 933 Å 2 , la surface d' interaction entre les deux molécules du dimère représente environ 13 % de la surface totale de BD2 . 20 ] . Avec un gain d' énergie libre associé à la formation du dimère de - 5 , 5 kcal / M le service PISA ( Krissinel et Henrick , 2007 ) proposé par l' EBI conclut que le dimère ne doit pas être stable en solution . En accord avec cette prédiction , nous n' avons pas observé de dimérisation expérimentalement . Tableau 20 : Liaisons hydrogène et ioniques entre les molécules A et B c . Interaction entre BD2 et le peptide H 3 -K 18 ac Bien que nous observions pour les chaînes latérales des résidus R17 et acK 18 des rotamères différents , l' interaction entre la molécule A et le peptide X est tout à fait similaire à celle qui existe entre la molécule B et le peptide Y [ Figure 41 ] . Le peptide Y présente à ses extrémités N et C terminales respectivement un et deux résidus définis supplémentaires par rapport au peptide X et des facteurs B plus bas . C' est pourquoi nous allons utiliser le modèle du complexe que forment les molécules B et Y pour discuter de l' interaction de BD2 et de H 3 -acK 18 . Avec environ 560 Å 2 , la surface d' interaction de BD2 et du peptide H 3 -K 18 ac représente 43 % de la surface totale accessible au solvant du peptide et 7 % de celle de BD2 . Elle est formée sur BD2 par les résidus W292 , P293 , F294 , V298 , L303 , G304 , L305 , H306 , N307 et Y308 de la boucle ZA , M343 et C347 de l' hélice ? A , Y350 , N351 , P352 , D354 , H355 , G356 et V357 de la boucle BC et M360 de la boucle ? C et par l' ensemble des résidus du peptide excepté par l' alanine A15 . Le peptide est stabilisé par 4 liaisons hydrogène , un pont salin [ Tableau 21 ] et plusieurs interactions hydrophobes . Avec un gain d' énergie libre de solvatation égal à - 8 , 3 kcal / M le service PISA ( Krissinel and Henrick , 2007 ) prédit que le dimère doit être stable en solution . Tableau 21 : Liaisons polaires et ioniques entre le peptide H 3 -acK 18 et BD2 La chaîne latérale de la lysine acétylée acK 18 s' engage dans la cavité hydrophobe du site de fixation formée à cet endroit par les résidus P293 , F294 , N296 , P297 , V298 , Y300 L 303 , L305 , Y308 , N351 , V357 . Une liaison hydrogène s' établit entre le groupe carbonyle du groupement acétyle porté par la lysine acK 18 et l' amine de l' asparagine N351 . La partie profonde de la cavité est occupée par un réseau de liaisons hydrogène très comparable à celui observé dans le site de fixation de BD1 . Il implique l' amine et le carbonyle de la chaîne latérale de la lysine acétylée , l' hydroxyle de Y308 , l' amine de N346 et les chaînes principales des résidus P293 , N296 , V298 , M316 et M343 bordant la cavité [ Figure 43 ] . Les résidus P297 , Y309 , I312 , P315 et D317 participent également à la constitution de la partie profonde de la cavité . A la surface du site de fixation , par son extrémité N terminale , le peptide établit une interaction hydrophobe entre le cycle de la proline P16 et le cycle de l' histidine H306 [ Figure 44 ] . Le carboxyle de la chaîne principale de la proline P16 participe ensuite à un réseau de liaisons hydrogène via une molécule d' eau avec les chaînes latérales de l' asparagine N307 et de la tyrosine Y350 . Dans la partie centrale du peptide , l' asparagine R17 établit une interaction ionique avec le groupe acide de l' aspartate D354 . La chaîne principale de la lysine acétylée acK 18 établit des liaisons polaires par son carboxyle avec l' histidine H355 et par son amine via une molécule d' eau avec l' asparagine N351 . La glutamine Q19 n' établit aucun contact avec BD2 . La leucine L20 se place dans un site hydrophobe constitué par les résidus W292 , P293 , E356 , V357 , M360 . L' alanine A21 et la thréonine T22 se placent en regard de la surface hydrophobe formée par la phénylalanine W292 et la méthionine M360 [ Figure 44 ] . C . Analyse des structures tridimensionnelles des bromodomaines de Brdt I. Des structures de bromodomaine canoniques La structure générale de BD1 est tout à fait comparable à celle de BD2 et à celle des bromodomaines pour lesquels nous disposons d' une structure [ Tableau 22 ] . Les principales variations sont , comme attendu , localisées dans les boucles ZA et BC [ Figure 45 ] . On remarque notamment une insertion importante dans la boucle ZA du second bromodomaine de Rsc 4 . Tableau 22 : Principales structures de bromodomaines connues utilisées pour la superposition . II . Interactions avec le peptide acétylé Nous avons observé que les sites de fixation des peptides sont constitués d' une cavité hydrophobe qui constitue le site de fixation de l' acK 5 de H4 et de l' acK 18 de H3 , d' un site hydrophobe secondaire dans lequel se place l' acK 8 de H4 et la leucine L20 de H3 , et de résidus de surface qui entrent en interaction avec les résidus adjacents aux lysines acétylées . a . L' interaction avec l' acétyl-lysine qui occupe la cavité principale est très conservée La cavité du site de fixation est observée chez tous les bromodomaines dont la structure a été résolue . Les résidus F51 , Y65 , P72 , N103 et N108 de BD1 et leurs équivalents chez les autres bromodomaines sont essentiels à la constitution de la cavité et sont conservés à l' identique . Par contre la position de la lysine acétylée est différente dans les complexes PCAF / Tat ( Mujtaba et al. , 2002 ) et CBP / P 53 ( Mujtaba et al. , 2004 ) . La liaison hydrogène qui s' établit entre le groupe carbonyle de l' acétyle de la lysine et une asparagine de la cavité ( N108 chez BD1 ) est conservée chez l' ensemble de ces complexes sauf pour Rsc 4 -BD 1 / Rsc 4 -K 25 ac ( à cause de la position en CIS de l' acK 25 ) , CBP / P 53 et PCAF / Tat . L' asparagine impliquée dans cette liaison est conservée chez environ 86 % des séquences disponibles dans les banques de données ( y compris chez les bromodomaines de CBP et PCAF ) . Récemment les auteurs des complexes CBP / P53 et PCAF / Tat ont publié de nouveaux résultats qui montrent l' existence de cette liaison hydrogène pour des complexes de CBP et PCAF avec des queues des histones H3 et H4 acétylées ( Zeng et al. , 2008 ) . Il semble donc que cette liaison hydrogène soit conservée , du moins chez les bromodomaines qui possèdent l' asparagine équivalente à N108 de Brdt-BD1 . Le réseau de liaisons hydrogène qui occupe le fond de la cavité et participe à la stabilisation de la lysine acétylée est lui aussi conservé chez Brdt-BD 1 / H 4 -K 5 K 8 ac , Brdt-BD 2 / H 3 -K 18 ac , Brdt-BD 2 / H 4 -K 12 ac , Gcn 5 / H 4 -K 16 ac et les récents complexes de PCAF et CBP . b . Un nouveau mode de reconnaissance d' une double acétylation par un unique bromodomaine Nos avons montré que Brdt-BD1 a besoin pour établir une interaction significative de la présence d' une di-acétylation de la queue H4 . L' affinité de BD1 pour les peptides H4 di-acetylés diminue avec l' allongement de la région qui sépare les deux lysines acétylées ( K 5 / K 8 = 22 µM > K 12 / K 16 = 116 µM ? K 8 / K 12 = 192 µM > K 5 / K 12 = 340 µM > K 8 / K 16 > 103 µM ) . Nous avons déterminé la structure cristallographique de BD1 en complexe avec le peptide H 4 -K 5 K 8 ac . Celle -ci révèle un mode nouveau de reconnaissance entre un bromodomaine et un peptide acétylé . Dans cette structure , les deux lysines acétylées K 5 ac et K 8 ac s' enfouissent dans la même cavité hydrophobe du site de fixation . Il est possible que l' éloignement des lysines acétylées joue un rôle important dans la diminution de l' affinité mesurée pour les autres peptides di-acétylés . L' enfouissement de la seconde lysine acétylée pourrait devenir difficile , voir impossible quand la longueur de la région qui sépare les deux acétyl-lysine augmente . Ainsi , la façon dont l' interaction avec un peptide di-acétylé sur les lysines 5 et 12 peut se faire n' est pas évidente à déduire de la structure en complexe avec H 4 -K 5 K 8 ac . Il semble difficile que le peptide puisse adopter une conformation qui permette aux deux acétyl-lysines , séparées par 6 résidus , de se placer dans le site hydrophobe de façon comparable aux acétyl-lysines 5 et 8 qui ont seulement 2 glycines entre elles . c . Des interactions variables avec le reste du peptide Le peptide H 4 -K 16 ac présente une surface complémentaire à celle du sillon que forme le site de fixation du bromodomaine de Gcn 5 mais sa chaîne principale établit une seule liaison hydrogène directe avec la protéine . La spécificité pour la séquence adjacente à la lysine acétylée vient de la liaison des chaînes latérales des résidus en K + 2 ( R17 ) et K + 3 ( H18 ) par rapport à la lysine acétylée ( Hudson et al. , 2000 ) . L' étude des structures de PCAF et CBP en complexe avec des peptides acétylés H3 et H4 permet aux auteurs de prédire que les peptides qui seront reconnus avec la meilleure affinité par PCAF sont ceux qui présentent un résidu hydrophobe en K + 2 et un résidu chargé ou aromatique en K + 3 alors que ceux reconnus préférentiellement par CBP devront avoir un résidu hydrophobe en K + 1 et K + 2 , un résidu chargé positivement en K- 1 , et un résidu aromatique en K- 2 ( Mujtaba et al. , 2007 ; Zeng et al. , 2008 ) . Nous avons vu que Brdt-BD1 interagit principalement avec les résidus en K + 3 ( AcK 8 ) et K + 5 ( L10 ) et que Brdt-BD2 établit ses interactions principales avec le peptide en K- 2 ( P16 ) , K- 1 ( R17 ) , et K + 2 ( L20 ) . Dans ces cinq cas , les résidus du peptide qui sont reconnus entourent la lysine acétylée , s' éloignant d' elle au plus de cinq acides-aminés . La reconnaissance implique les boucles ZA et BC ( de séquences très variables ) sans qu' il soit possible de dégager une position préférentiellement impliquée dans l' interaction avec le peptide . La flexibilité de ces boucles permet probablement à chaque bromodomaine de s' adapter à son substrat . d . Un chemin similaire à la surface du site Pour autant les chemins suivis par les peptides H 4 -K 5 K 8 ac , H 3 -K 18 ac , H 4 -K 16 ac et Rsc 4 -K 25 ac à la surface de leurs sites de fixation sont comparables . Ils empruntent tous un sillon principalement formé par l' asparagine très conservée ( qui forme avec la lysine acétylée une liaison hydrogène ) et par le résidu qui la précède ( le plus souvent une tyrosine : chez Brdt-BD1 , Brdt-BD2 , yGcn 5 , yRsc 4 -BD1 ou une phénylalanine : chez yRsc 4 -BD2 par exemple ) . L' orientation de la chaîne peptidique de H 4 -K 5 K 8 ac , celle de H 3 -K 18 ac et celle de Brd 2 -BD 1 / H 4 -K 12 ac [ PDB : 2DVQ ] sont les mêmes , elle est opposée à celle des peptides H 4 -K 16 ac et Rsc 4 -K 25 ac [ Figure 47 ] . Le peptide H 4 -K 12 ac dans la structure en complexe avec Brdt-BD2 emprunte un chemin perpendiculaire par rapport à celui que nous venons de décrire . Ce peptide ne présentait pas pour BD2 d' affinité mesurable par ITC . Il est probable que ce chemin alternatif soit du à une affinité très basse pour BD2 . La lysine acétylée acK 12 se place de façon similaire aux autres lysines acétylées mais le reste de la chaîne est très peu stabilisé par le bromodomaine . Il est probable que ce chemin alternatif soit dû à une interaction non spécifique avec le bromodomaine . De même le peptide H 4 -K 20 ac qui est considéré comme non spécifique car il présente pour P / CAF une affinité faible par rapport à d' autres peptides ( Zeng et al. , 2008 ) ne passe pas dans le sillon de l' asparagine conservée . III . Particularités de l' interaction de BD1 et du peptide H 4 -K 5 K 8 ac a . La cavité hydrophobe Les résidus P50 , F51 , V55 , L60 , L62 , Y65 , Y107 , N108 , I114 de BD1 constituent la cavité du site de fixation occupé par l' AcK 5 . Excepté la leucine L60 et l' isoleucine I114 , ils sont conservés ( identiques ou similaires ) parmi les bromodomaines de structure connue [ Figure 49 ] . La leucine L60 appartient à une l' insertion de 2 acides-aminés , commune aux protéines de la famille BET et aux bromodomaines de CBP et P300 mais absente des bromodomaines de Gcn 5 , Rsc 4 , TafII 250 , PCAF , Brg 1 , Brd 7 et ACF1 . La présence ce cette insertion a pour effet de resserrer l' entrée de la cavité . b . Le second site hydrophobe L' isoleucine I114 se trouve sur le côté opposé de la cavité et constitue principalement la surface du site de fixation de la seconde lysine acétylée acK 8 . A cette position on trouve soit une isoleucine ( BD1 des protéines BET , Rsc 4 -BD1 , Rsc 4 -BD2 , Brg 1 et ACF1 ) , soit une valine ( BD2 des protéines BET , hCBP , hP 300 ) soit une leucine ( hTAFII 250 -BD1 ) soit une tyrosine ( hTAFII 250 -BD2 , yGcn 5 , hPCAF , hBrd 7 ) . La substitution de l' isoleucine par une leucine ou une valine ne provoque pas de changement important ni du relief ni du potentiel électrostatique de la surface . Par contre , la substitution du résidu par une tyrosine provoque un encombrement stérique important . La superposition des structures de Brdt-BD1 en complexe avec le peptide H 4 -K 5 K 8 ac et de celle du bromodomaine de Gcn 5 [ PDB : 1E6I ] qui présente une tyrosine à cette position montre que la fixation de la première lysine acétylée n' est pas gênée mais que celle de la seconde lysine acétylée devient impossible [ Figure 48 ] . Les autres résidus ( W49 et M117 ) qui constituent le site de l' acK 8 sont variables sauf chez les bromodomaines BD1 et BD2 de la famille BET . c . Le sillon du peptide Les résidus qui forment la couronne électropositive et ceux qui forment le site hydrophobe de la leucine L10 sont variables chez les bromodomaines étudiés sauf au sein des domaines BD1 des protéines de la famille BET chez qui les principaux résidus impliqués dans l' interaction avec le peptide H 4 -K 5 K 8 ac sont conservés . De plus aucune des variations de séquence entre ces bromodomaines ne semble pouvoir affecter la liaison du peptide soit parce que le résidu est trop éloigné du site soit parce qu' il s' agit d' un remplacement par un résidu de même nature . La seule variation de séquence touchant un résidu situé à proximité du site de fixation ( mais qui n' établit pas d' interaction avec le peptide ) se trouve à la position G111 . Ce résidu est situé dans la boucle BC , nous allons voir l' importance de celle -ci pour l' établissement de la différence de spécificité entre Brdt-BD1 et Brdt-BD2 . On trouve à cette position une thréonine chez Brd 2 -BD1 et Brd 3 -BD1 et une glycine chez Brd 4 -BD1 . IV . Particularités de l' interaction de BD2 et du peptide H 3 K 18 ac Comme pour BD1 , les principaux résidus qui constituent le site de fixation de l' acK 18 sont conservés chez l' ensemble des bromodomaines de structure connue , à l' exception de la leucine L303 et de la valine V357 . Ces deux résidus sont variables sauf chez les domaines BD2 des protéines de la famille BET . Il s' agit de la leucine L303 qui appartient à l' insertion de la boucle ZA caractéristique de la famille BET et de la valine V357 qui constitue le second site hydrophobe du site de fixation . Les résidus impliqués dans l' interaction avec le reste du peptide - en particulier l' aspartate D357 qui établit une liaison ionique avec la chaîne latérale de l' arginine R17 - sont variables , sauf chez les domaines BD2 de Brd 2 , Brd 3 et Brd 4 . Au sein des domaines BD2 des protéines de la famille BET , les principaux résidus impliqués dans l' interaction avec le peptide H 3 -K 18 ac sont conservés à l' identique . On note deux positions qui subissent un changement dont une est située dans la boucle BC . A cette position , le glutamate E355 de Brdt-BD2 est substitué par un aspartate chez Brd 2 alors que le glutamate est conservé chez Brd 3 et Brd 4 . Il est donc probable que la spécificité de Brdt-BD2 vis à vis du peptide H 3 -K 18 ac soit conservée au moins chez Brd 3 et Brd 4 . En accord avec cela , il a été montré que Brd 2 ne présente pas d' affinité pour l' histone H3 acétylée ( Kanno et al. , 2004 ) alors que Brd 4 reconnaît le peptide H 3 -K 9 / K 14 ac avec une affinité similaire au peptide H 4 -K 5 / K 12 ac ( Dey et al. , 2003 ; Liu et al. , 2008 ) . Partie IV : Discussion et perspectives Discussion et perspectives A . Importance du premier bromodomaine de Brdt I. Brdt reconnaît l' histone H4 via son premier bromodomaine Nous avons montré que l' affinité du premier bromodomaine de Brdt pour une queue N terminale synthétique de l' histone H4 tétra-acétylée tétra-acétylée est quasiment aussi forte que celle de l' ensemble de la partie N terminale de Brdt ( ? C-Brdt ) contenant les deux bromodomaines et leurs régions adjacentes ( respectivement 11 , 4 µM et 28 µM ) . Ces résultats sont en accord avec ceux obtenus par Pivot-Pajot et ses collègues , qui montrent que ? C-Brdt est co-purifié avec un peptide H4 tétra-acétylé mais que la co-purification n' a pas lieu si BD1 est inactivé ( Pivot-Pajot et al. , 2003 ) . Confortant la spécificité de BD1 pour la queue H4 , le domaine n' a pas montré d' affinité pour un peptide mimant la queue N terminale de l' histone H3 tétra-acétylée . La constante de dissociation pour la liaison du peptide H4 tétra-acétylé tétra-acétylé est comparable à celle déterminée pour la liaison du double bromodomaine de TAFII250 pour différents peptides H4 acétylés ou à celle du double bromodomaine de Bdf 1 pour les peptides H4 tétra-acétylés et H 3 -K 14 ac / K 18 ac [ Tableau 23 ] . Ainsi Brdt et Bdf 1 qui sont homologues et appartiennent tout les deux à la famille des protéines BET , pourraient avoir la même spécificité . Cependant , dans leur étude , A . Ladurner et ses collègues déterminent l' affinité de la protéine entière mais non celles des domaines BD1 et BD2 de façon indépendante . Tableau 23 : Affinités comparables à celles de Brdt-BD1 Nos résultats confirment l' association de Brdt et de l' histone H4 acétylée observé in-vivo par J. Govin et ses collègues . Ceux -ci ont montré que dans les spermatides la chromatine subit , avant sa compaction , une vague d' acétylation qui touche les histones H4 ( sur les lysines 5 , 8 et 12 ) et H2A et que Brdt est associé à ces régions hyperacétylées ( Govin et al. , 2006 ) . L' importance de BD1 est encore mise en évidence par une étude qui montre que dans une souris dont seul le premier bromodomaine a été inactivé , le nombre des spermatides dont la chromatine est condensée chute considérablement et que leur morphologie est sévèrement altérée ( Shang et al. , 2007 ) . II . Brdt-BD1 reconnaît spécifiquement le motif di-acétylé K 5 / K 8 ac de H4 Nous avons identifié les déterminants nécessaires et suffisants à la reconnaissance du peptide H4 tétra-acétylé par Brdt-BD1 . Nos résultats montrent que BD1 a besoin , pour établir une interaction significative , de la présence d' une di-acétylation de la queue H4 et qu' il ne montre pas d' affinité comparable pour les peptides H4 mono-acétylés . BD1 reconnaît préférentiellement la di-acétylation des lysines K5 / K8 de H4 avec une affinité qui souligne la spécificité de l' interaction . Ces résultats sont cohérents avec l' état hyperacétylé de l' histone H4 dans les spermatides allongés et la détection majoritaire